سال 19، شماره 73 - ( English 1398 )                   سال 19 شماره 73 صفحات 70-63 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Yazdani F, Rasooli I, Sefidkon F, Saidi N, Owlia P. The effect of subinhibitory concentrations of Satureja spp. essential oils on the biofilm formation and urease activity of Klebsiella pneumoniae. J. Med. Plants 2020; 19 (73) :63-70
URL: http://jmp.ir/article-1-2610-fa.html
یزدانی فاطمه، رسولی ایرج، سفیدکن فاطمه، سعیدی نوید، اولیاء پرویز. اثرات مهاری گونه‌های مرزه علیه تشکیل بیوفیلم و فعالیت اوره‌آزی کلبسیلا پنمونیه در غلظت‌های کمتر از غلظت بازداری. فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 19 (73) :63-70

URL: http://jmp.ir/article-1-2610-fa.html


1- مرکز تحقیقات میکروب‌شناسی مولکولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران
2- مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
3- مرکز تحقیقات میکروب‌شناسی مولکولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران ، powlia@gmail.com
چکیده:   (2432 مشاهده)
مقدمه: کلبسیلا پنومونیه یکی از مهم‌ترین باکتری‌هایی است که موجب عفونت‌های بیمارستانی می‌شود. این پاتوژن فرصت طلب، دارای پتانسیل بالایی در ایجاد مقاومت آنتی‌بیوتیکی بوده و می‌تواند تشکیل لایه ضخیمی از بیوفیلم بدهد. امروزه سویه‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک در حال ظهور و گسترش در دنیا می‌باشند. بنابراین مقابله با سویه‌های مقاوم به دارو به وسیله داروهای نوین (مانند گیاهان دارویی) ضروری است. هدف: این مطالعه با هدف بررسی اثر ضد باکتریایی اسانس‌هایSatureja rechingeri Jamzad، S. khuzestanica Jamzad، S. bachtiarica Bunge وS. mutica Fisch. & C.A.Mey. در شرایط آزمایشگاهی علیه کلبسیلا پنومونیه ATCC 700603 انجام شد. روش بررسی: برای بررسی حداقل غلظت بازدارندگی (MIC) اسانس‌ها، روش براث میکرودایلوشن استفاده شد. روش میکروتیتر پلیت برای ارزیابی اثرات ضد بیوفیلمی مقادیر sub-MIC اسانس‌ها استفاده شد. از روش رنگ‌سنجی و یدومتریک برای تعیین فعالیت‌های اوره‌آزی و بتالاکتامازی استفاده شد. نتایج: بر اساس نتایج جمع‌آوری شده، مقدار MIC اسانس‌ها µg/ml 4096 بود. مقادیرsub-MIC اسانس‌ها تشکیل بیوفیلم و فعالیت اوره‌آزی کلبسیلا پنومونیه را مهار نمود، اسانسS. khuzestanica بیشترین تاثیر را از خود نشان داد. هیچ‌کدام از اسانس‌ها نتوانستند به صورت معناداری فعالیت بتالاکتامازی کلبسیلا پنومونیه را کاهش دهند. نتیجه‌گیری: بر اساس بررسی انجام شدهS. khuzestanica دارای اثر ضد باکتریایی، ضد بیوفیلمی و مهارکنندگی اوره‌آز خوبی بر علیه کلبسیلا پنومونیه بود، ولی مطالعات بیشتری برای شناخت عملکرد دقیق و مکانیسم ضد باکتریایی این ترکیب گیاهی مورد نیاز است.
متن کامل [PDF 489 kb]   (1264 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشی | موضوع مقاله: فارماكوگنوزی و فارماسيوتيكس
دریافت: 1398/5/8 | پذیرش: 1398/8/18 | انتشار: 1399/3/17

فهرست منابع
1. Seifi K, Kazemian H, Heidari H, Rezagholizadeh F, Saee Y, Shirvani F and Houri H. Evaluation of biofilm formation among Klebsiella pneumoniae isolates and molecular characterization by ERIC-PCR . Jundishapur J. Microbiol. 2016; 9 (1): e30682. [DOI:10.5812/jjm.30682]
2. Ghanavati R, Darban-Sarokhalil D, Navab-Moghadam F, Kazemian H, Irajian G and Razavi S. First report of coexistence of AmpC beta-lactamase genes in Klebsiella pneumoniae strains isolated from burn patients. Acta Microbiol. Immunol. Hung. 2017; 64 (4): 455-62. [DOI:10.1556/030.64.2017.028]
3. Anderl JN, Franklin MJ, Stewart PS. Role of antibiotic penetration limitation in Klebsiella pneumoniae biofilm resistance to ampicillin and ciprofloxacin. Antimicrob. Agents Chemother. 2000; 44 (7): 1818-24. [DOI:10.1128/AAC.44.7.1818-1824.2000]
4. Tayebi Z, Heidari H, Kazemian H, Ghafoori SM, Boroumandi S and Houri H. Comparison of quinolone and beta-lactam resistance among Escherichia coli strains isolated from urinary tract infections. Infez. Med. 2016; 24 (4): 326-30.
5. Kazemian H, Ghafourian S, Heidari H, Amiri P, Yamchi JK, Shavalipour A, Houri H, Maleki A and Sadeghifard N. Antibacterial, anti-swarming and anti-biofilm formation activities of Chamaemelum nobile against Pseudomonas aeruginosa. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 2015; 48 (4): 432-6. [DOI:10.1590/0037-8682-0065-2015]
6. Kazemian H, Heidari H, Yamchi JK, Zandi H, Taji A, Yazdani F, Ghanavati R, Rahdar HA and Feizabadi MM. In vitro anti-mycobacterial activity of three medicinal plants of Lamiaceae family. Recent Pat. Antiinfect. Drug Discov. 2018; 13 (3): 240-5. [DOI:10.2174/1574891X13666180626170155]
7. Güllüce M, Sökmen M, Daferera D, Aǧar G, Özkan H, Kartal N, Polissiou M, Sökmen A and Şahin F. In vitro antibacterial, antifungal, and antioxidant activities of the essential oil and methanol extracts of herbal parts and callus cultures of Satureja hortensis L. J. Agric. Food Chem. 2003; 51 (14): 3958-65. [DOI:10.1021/jf0340308]
8. CLSI. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing; eighteenth informational supplement M100. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 2018.
9. Pourhajibagher M, Kazemian H, Chiniforush N, Hosseini N, Pourakbari B, Azizollahi A, Rezaei F and Bahador A. Exploring different photosensitizers to optimize elimination of planktonic and biofilm forms of Enterococcus faecalis from infected root canal during antimicrobial photodynamic therapy. Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2018; 24: 206-11. [DOI:10.1016/j.pdpdt.2018.09.014]
10. Hamilton-Miller JM and Gargan RA. Rapid screening for urease inhibitors. Invest. Urol. 1979; 16 (5): 327-8.
11. Rajasekharan SK, Ramesh S, Satish AS, Lee J. Antibiofilm and Anti-beta-Lactamase Activities of Burdock Root Extract and Chlorogenic Acid against Klebsiella pneumoniae. J. Microbiol. Biotechnol. 2017; 27 (3): 542-51. [DOI:10.4014/jmb.1609.09043]
12. Taebi S, Nosrati M. Evaluation of Anti-Bacterial Activity and Biofilm Inhibition of Satureja Khuzestanica Jamzad against Streptococcus Mutans. J. Arak Univ. Med Sci. 2017; 19 (11): 26-38.
13. Amaral VC, Santos PR, da Silva AF, dos Santos AR, Machinski Jr M and Mikcha JM. Effect of carvacrol and thymol on Salmonella spp. biofilms on polypropylene. Int. J. Food Sci. Technol. 2015; 50 (12): 2639-43. [DOI:10.1111/ijfs.12934]
14. Taghian E, Saidi N, Sefidkon F, Saderi H, Rasooli I, Mohammad SR and Owlia P. Effect of Satureja essential oils on biofilm formation and hemolysin production in Staphylococcus aureus. Iranian J. Med and Arom. Plants 2018; 34 (89): 380-390.
15. Baydar H, Sağdiç O, Özkan G and Karadoğan T. Antibacterial activity and composition of essential oils from Origanum, Thymbra and Satureja species with commercial importance in Turkey. Food Control. 2004; 15 (3): 169-72. [DOI:10.1016/S0956-7135(03)00028-8]
16. Surdeau N, Laurent-Maquin D, Bouthors S and Gellé MP. Sensitivity of bacterial biofilms and planktonic cells to a new antimicrobial agent, Oxsil® 320N. J. Hosp. Infect. 2006; 62 (4): 487-93. [DOI:10.1016/j.jhin.2005.09.003]
17. Maroncle N, Rich C and Forestier C. The role of Klebsiella pneumoniae urease in intestinal colonization and resistance to gastrointestinal stress. Res. Microbiol. 2006; 157 (2): 184-93. [DOI:10.1016/j.resmic.2005.06.006]
18. Ahmad VU, Hussain J, Hussain H, Jassbi AR, Ullah F, Lodhi MA, Yasin A and Choudhary MI. First natural urease inhibitor from Euphorbia decipiens. Chem Pharm. Bull. 2003; 51 (6): 719-23. [DOI:10.1248/cpb.51.719]
19. Derakhshan S, Sattari M and Bigdeli M. Effect of subinhibitory concentrations of cumin (Cuminum cyminum L.) seed essential oil and alcoholic extract on the morphology, capsule expression and urease activity of Klebsiella pneumoniae. Int. J. Antimicrob. Agents 2008; 32 (5): 432-6. [DOI:10.1016/j.ijantimicag.2008.05.009]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به فصلنامه علمی پژوهشی گیاهان دارویی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Journal of Medicinal Plants

Designed & Developed by : Yektaweb