سال 18، شماره 70 - ( 3-1398 )                   سال 18 شماره 70 صفحات 86-73 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Afrasiabi A, Zarei M. Tyrosinase Inhibition, Antioxidant Activity and GC-MS Analysis of the Hexane Extracts of the Aerial Parts of Astragalus vegetusBungi. and Gundelia turnifortii L.. J. Med. Plants 2019; 18 (70) :73-86
URL: http://jmp.ir/article-1-2563-fa.html
افراسیابی ابوطالب، زارعی محمد‌علی. سنتیک مهار تیروزیناز، فعالیت آنتی‌اکسیدانی و آنالیز GC-MS عصاره هگزانی اندام‌های هوایی مجزای گیاهان گون (Astragalus vegetus Bunge) و کنگر (Gundelia tournifortii L.). فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 18 (70) :73-86

URL: http://jmp.ir/article-1-2563-fa.html


1- کارشناس ارشد گروه علوم زیستی، دانشکده علوم، دانشگاه کردستان، کردستان، ایران
2- دانشیار گروه علوم زیستی، دانشکده علوم، دانشگاه کردستان، کردستان، ایران ، mazarei@uok.ac.ir
چکیده:   (3972 مشاهده)
مقدمه: تیروزیناز یک پلی فنل‌اکسیداز حاوی مس است که در ملانوژنز دخالت داشته و در فرایند قهوه‌ای شدن آنزیمی، که موجب تغییر رنگ و از دست دادن ارزش غذایی در محصولات گیاهی می‌شود. تیروزیناز نقش با اهمیتی را به عنوان کاتالیزور آنزیمی بازی می‌کند.
هدف: تعیین درصد مهار، تحلیل سنتیکی مهار تیروزیناز و تعیین اثر آنتی‏اکسیدانی عصاره هگزانی اندام‌های هوایی گیاهان گون و کنگر.
روش بررسی: عصاره هگزانی گیاهان ‌به روش خیساندن در هگزان و تغلیظ حرارتی به دست آمد. اثر مهاری عصاره‌ها در چهار غلظت 1، 1/0، 01/0 و 001/0 میلی‌گرم در میلی‌لیتر در طول موج 492 نانومتر با استفاده از دستگاه میکروپلیت ریدر تعیین شد. از اسید کوجیک به عنوان کنترل مثبت استفاده شد. تعیین فعالیت آنتی‏اکسیدانی با استفاده از DPPH انجام و از آسکوربیک اسید به عنوان کنترل مثبت استفاده شد. در تعیین ترکیبات عصاره‌ها ازدستگاه GC/MS استفاده شد.
نتایج: فعالیت مهاری عصاره هگزانی برگ گیاه گون برابر 6/66 درصد و برای برگ و گل گیاه کنگر به ترتیب برابر با 7/71 و 7/68 درصد بود. مقدار IC50 برای برگ گیاه گون 5/0 میلی‌گرم در میلی‌لیتر و برای برگ و گل گیاه کنگر به ترتیب برابر 5/0 و 32/0 میلی‌گرم در میلی‌لیتر بود. برگ گیاه گون نیز میزان فعالیت آنتی‏اکسیدانی قابل توجهی از خود نشان داد. آنالیز GC/MS نتایج معنی‏داری در زمینه معرفی ترکیبات بالقوه مهارکننده به دست نداد.
نتیجه‌گیری: عصاره‏های هگزانی تهیه شده از اندام‌های گیاهانی که بیشترین اثر مهارکنندگی تیروزیناز را از خود نشان دادند جهت تهیه مهار‌کننده‌های جدید این آنزیم با هدف تولید داروهایی با اثرات جانبی کمتر مناسب هستند.
متن کامل [PDF 1129 kb]   (3303 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشی | موضوع مقاله: فارماكوگنوزی و فارماسيوتيكس
دریافت: 1396/2/7 | پذیرش: 1396/2/15 | انتشار: 1398/3/5

فهرست منابع
1. Abbasi A.M, Khan M.A, Ahmad M, Zafar M, Jahan S and Sultana S. Ethnopharmacological application of medicinal plants to cure skin diseases and in folk cosmetics among the tribal communities of North-WestFrontier Province. J. Ethnopharmacol. 2010; 128: 322-335. [DOI:10.1016/j.jep.2010.01.052]
2. DeWet H, Nciki S and vanVuuren S.F. Medicinal plants used for the treatment of various skin disorders by a rural community in northern Maputaland. South African Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine 2013; 9: 51. [DOI:10.1186/1746-4269-9-51]
3. van Gelder CW, Flurkey WH and Wichers HJ, Sequence and structural features of plant and fungal tyrosinases. Phyto Chem. 1997; 45: 1309-23. [DOI:10.1016/S0031-9422(97)00186-6]
4. Hearing VJ, Determination of melanin synthetic pathways. J. Invest. Dermatol. 2011; 131: 8 - 11. [DOI:10.1038/skinbio.2011.4]
5. Mayer AM, Polyphenol oxidases in plants: recent progress. Phyto Chem. 1987; 26: 11 - 20. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)81472-7]
6. Rigal D, Cerny M, Richard-Forget F and Varoquaux P. Polyphenol oxidase by a Carica papaya latex preparation. Int. J. Food Sci. Technol. 2001; 36: 677-84. [DOI:10.1046/j.1365-2621.2001.00498.x]
7. Tripathi R.K, Hearing VJ, Urabe K, Aroca P, and Spritz R.A. Mutational mapping of the catalytic activities of human tyrosinase. J. Biological. 1992; 267: 23707-23712.
8. Schallreuter K U, Hasse S, Rokos H, Chavan B, Shalbaf M and Spencer JD. Cholesterol regulates melanogenesis in human epidermal melanocytes and melanoma cells. Experimental Dermatol. 2009; 18: 680-688. [DOI:10.1111/j.1600-0625.2009.00850.x]
9. Kim YJ and Uyama H. Tyrosinase inhibitors from natural and synthetic sources: structure, inhibition mechanism and perspective for the futur. Cell Mol. Life Sci. 2005; 62: 1707-23. [DOI:10.1007/s00018-005-5054-y]
10. Chang TS. An updated review of tyrosinase inhibitors. Int. J. Mol. Sci. 2009; 10: 2440-75. [DOI:10.3390/ijms10062440]
11. Zong-Ping Z, Hui-Yuan T, Jie Ch and Mingfu W. Characterization of tyrosinase inhibitors in the twigs of Cudrania tricuspidata and their structure-activity relationship study Fitoterapia 2013; 84: 224 - 42. [DOI:10.1016/j.fitote.2012.12.006]
12. Jimbow K, Obata H, Pathak MA and Fitzpatrick TB. Mechanism of depigmentation by hydroquinone. J. Invest. Dermatol. 1974; 62: 436-49. [DOI:10.1111/1523-1747.ep12701679]
13. Curto EV, Kwong C, Hermersdörfer H, Glatt H, Santis C and Virador V. Inhibitors of mammalian melanocyte tyrosinase: in vitro comparisons of alkyl esters of gentisic acid with other putative inhibitors. Biochem. Pharmacol. 1999; 57: 663-72. [DOI:10.1016/S0006-2952(98)00340-2]
14. Zhu Y. J, Zhou H. T, Hu Y. H, Tang J. Y, Su M. X and Guo Y. J. Antityrosinase and antimicrobial activities of 2-phenylethanol, 2-phenylacetaldehyde and 2-phenylacetic acid. Food Chem. 2011; 124: 298-302. [DOI:10.1016/j.foodchem.2010.06.036]
15. Hashemi F and Zarei MA. Tyrosinase Inhibitory Activity Within Hexane Extract of Ten Screened Plants From Kurdistan Province of Iran. International Journal of Advanced Res. 2014; 2 (11): 2795-2799.
16. Khatib S, Nerya O, Musa R, Shmuel M, Tamira S and Vayaa J. Chalcones as potent tyrosinase inhibitors: the importance of a 2,4-substituted resorcinol moiety. Bioorganic & Medicinal Chemistry 2005; 13: 433-441. [DOI:10.1016/j.bmc.2004.10.010]
17. Fu R, Zhang Y, Guo Y and Chen F. Antioxidant and tyrosinase inhibition activities of the ethanol-insoluble fraction of water extract of Sapium sebiferum (L.) Roxb. leaves. South African Journal of Botany 2014; 93: 98-104. [DOI:10.1016/j.sajb.2014.04.003]
18. Dung NT, Ajpai VK, Rahman A, Yoon JI and Kang SC. Phenolic contents, antioxidant and tyrosinase inhibitory activities of Loonier japonica thumb. Journal of Food Biochemistry 2011; 35: 148-160. [DOI:10.1111/j.1745-4514.2010.00461.x]
19. Jun Young K, Kyeong Yeol Oh, Ji Young K, Hyung Won R, Sook J and Ki Hun P. Polyphenols Displaying Tyrosinase Inhibition from the Seed of Psoralea corylifolia. J. Korean Soc. Appl. Biol. Chem. 2010; 534: 427-432. [DOI:10.3839/jksabc.2010.066]
20. Mai F, Nobuo Y and Mitsuo M. Tyrosinase inhibitory constituents from the bark of Peltophorum dasyrachis (yellow batai). Natural Product Res. 2011; 25: 1540-1548. [DOI:10.1080/14786410903313106]
21. Chun L, Ju-Hwan L, Seung-Hyung K and Dong-Seon K, Dioscin: A synergistic tyrosinase inhibitor from the roots of Smilax china. Food Chem. 2012; 134: 1146-1148. [DOI:10.1016/j.foodchem.2012.03.003]
22. Tomas FM K, Teunie van H, Jean-Paul Vi, Renske H J, Deborah L N, Willem v.B and Harry G. Potato and Mushroom Polyphenol Oxidase Activities Are Differently Modulated by Natural Plant Extracts J. Agric Food Chem. 2013; 62: 214-221. [DOI:10.1021/jf4043375]
23. Ozlem D, Temine S, Mehmet O and Gulacti T. Antioxidant and Tyrosinase Inhibitory Activities of Flavonoids fromTrifolium nigrescens Subsp. Petrisavi. J. Agric. Food Chem. 2013; 61: 12598-12603. [DOI:10.1021/jf403669k]
24. Yang Y, Yang S, Chen M, Zhang X, Zou Y, and Zhang X. Compound Astragalus and Salvia miltiorrhiza extract exerts anti-fibrosis by mediatingTGF-beta/Smad signaling in myofibroblasts. J. Ethnopharmacol. 2008; 118: 264-270. [DOI:10.1016/j.jep.2008.04.012]
25. Cho W and Leung K. Invitro and in vivo anti-tumor effects of Astragalus membranaceus. Cancer Letters 2007; 252: 43-54. [DOI:10.1016/j.canlet.2006.12.001]
26. Auyeung K, Law P and Ko J. Astragalus saponins induce apoptosis via an ERK- independent NF-κB signaling pathway in the human hepatocellular HepG2cell line. International Journal of Molecular Medicine 2009; 23: 189-196.
27. Ebrahimzadeh H, Niknam V and Maassoumi A. A. The sterols of Astragalus species from Iran: GLC separation and quantification. Biochemical Systematics and Ecol. 2001; 9: 393-404. [DOI:10.1016/S0305-1978(00)00065-X]
28. Asgary S, Movahedian A, Badiei A, Naderi GA, Amini F and Hmidzadeh Z. Effect of Gundelia tournefortii on some cardiovascular risk factors in animal model. Journal of Medicinal Plants Res. 2009; 7 (28): 112-119.
29. Sarper F, Akadin G, Simsek I and Yesildad E. An ethnobotanical field survey in the haymana district of Ankara Province in Turkey. Turkish J. Biol. 2009; 33: 79-88.
30. Coruh N, Saghdicoglu Celep AG, Ozgokce F and Iscan M. Antioxidant capacities of Gundelia tournefortii L. extract and inhibition on glutathione-S-transferase activity. Food Chem. 2007; 100: 1249-53. [DOI:10.1016/j.foodchem.2005.12.008]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به فصلنامه علمی پژوهشی گیاهان دارویی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Journal of Medicinal Plants

Designed & Developed by : Yektaweb