سال 18، شماره 72 - ( 8-1398 )
سال 18 شماره 72 صفحات 148-135 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Farokhi S, Bahrami G, Babaie A, Farzaei M. Protective and Therapeutic Effect of Oleoresin of Pistacia atlantica in Acetic Acid-induced Colitis in Rat. J. Med. Plants 2019; 18 (72) :135-148
URL: http://jmp.ir/article-1-2709-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-2709-fa.html
فرخی سحر، بهرامی غلامرضا، بابایی عاطفه، فرزایی محمدحسین. بررسی اثر محافظتی و درمانی اولئورزین سقز (Pistacia atlantica) در کولیت اولسروز القا شده توسط اسید استیک در موش صحرایی. فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 18 (72) :135-148
سحر فرخی1 
، غلامرضا بهرامی2 ، عاطفه بابایی2 ، محمدحسین فرزایی* 3
، غلامرضا بهرامی2 ، عاطفه بابایی2 ، محمدحسین فرزایی* 3
1- کمیته تحقیقات دانشجویان، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
2- مرکز تحقیقات علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
3- مرکز تحقیقات علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران ،mh.farzaei@gmail.com
2- مرکز تحقیقات علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
3- مرکز تحقیقات علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران ،
چکیده: (4485 مشاهده)
مقدمه: کولیت اولسروز یک بیماری التهابی، مزمن و عودکننده دستگاه گوارش است که منشاء آن ناشناخته می‌باشد. در طب سنتی ایران اولئورزین سقز در درمان اختلالات گوارشی از جمله زخم‌های گوارشی، مشکلات سوء‌هاضمه و التهابات روده کاربرد دارد.
هدف: در این مطالعه اثرات درمانی و محافظتی اولئورزین سقز در کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش صحرایی را بررسی می‌کنیم.
روش بررسی: اولئورزین سقز حل شده در توئین80 (1%v/v)، با دوزهای 100، 200 و 400 میلی‌گرم بر کیلو‌گرم به روش خوراکی به حیوانات تجویز شد. در روش درمانی سه روز پس از القای کولیت، موش‌ها به مدت 6 روز تحت درمان قرار گرفتند و پس از تعیین مؤثرترین دوز در روش درمانی، در روش محافظتی حیوانات به مدت 6 روز با دوز بهینه صمغ، تحت درمان قرار گرفته و سپس کولیت القا شد و به مدت 3 روز دیگر درمان ادامه یافت. در انتها جهت بررسی‌های میکروسکوپی و ماکروسکوپی، حیوانات بوسیله اتر بیهوش و کولون حیوانات خارج شد.
نتایج: در روش درمانی اولئورزین سقز به صورت وابسته به دوز اثرات چشمگیری در القای بهبودی در کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش نشان داد (05/0 P<) اما در روش محافظتی تفاوت قابل توجهی میان گروه‌های درمان و کنترل منفی مشاهده نشد (05/0 P>).
نتیجه‌گیری: این مطالعه اثرات مفید ضد التهابی و ترمیم زخم اولئورزین سقز در درمان کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش صحرایی را نشان داد.
هدف: در این مطالعه اثرات درمانی و محافظتی اولئورزین سقز در کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش صحرایی را بررسی می‌کنیم.
روش بررسی: اولئورزین سقز حل شده در توئین80 (1%v/v)، با دوزهای 100، 200 و 400 میلی‌گرم بر کیلو‌گرم به روش خوراکی به حیوانات تجویز شد. در روش درمانی سه روز پس از القای کولیت، موش‌ها به مدت 6 روز تحت درمان قرار گرفتند و پس از تعیین مؤثرترین دوز در روش درمانی، در روش محافظتی حیوانات به مدت 6 روز با دوز بهینه صمغ، تحت درمان قرار گرفته و سپس کولیت القا شد و به مدت 3 روز دیگر درمان ادامه یافت. در انتها جهت بررسی‌های میکروسکوپی و ماکروسکوپی، حیوانات بوسیله اتر بیهوش و کولون حیوانات خارج شد.
نتایج: در روش درمانی اولئورزین سقز به صورت وابسته به دوز اثرات چشمگیری در القای بهبودی در کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش نشان داد (05/0 P<) اما در روش محافظتی تفاوت قابل توجهی میان گروه‌های درمان و کنترل منفی مشاهده نشد (05/0 P>).
نتیجه‌گیری: این مطالعه اثرات مفید ضد التهابی و ترمیم زخم اولئورزین سقز در درمان کولیت القا شده توسط اسید استیک در موش صحرایی را نشان داد.
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
فارماكولوژی و سم شناسی
دریافت: 1397/4/3 | پذیرش: 1397/5/30 | انتشار: 1398/8/6
دریافت: 1397/4/3 | پذیرش: 1397/5/30 | انتشار: 1398/8/6
فهرست منابع
1. Minaiyan M, Karimi F and Ghannadiand Rahimi A. Anti-inflammatory effect of Pistacia atlantica subsp. kurdica volatile oil and gum on acetic acid-induced acute colitis in rat. RJP. 2015; 2 (2): 1-12.
2. Low D, Nguyen DD and Mizoguchi E. Animal models of ulcerative colitis and their application in drug research. DDDT. 2013; 7: 1341. [DOI:10.2147/DDDT.S40107]
3. Kuenzig ME, Lee SM, Eksteen B, Seow CH, Barnabe C, Panaccione R and et al. Smoking influences the need for surgery in patients with the inflammatory bowel diseases: a systematic review and meta-analysis incorporating disease duration. BMC Gastroenterol. 2016; 16 (1): 143. [DOI:10.1186/s12876-016-0555-8]
4. Felder JB, Korelitz BI, Rajapakse R, Schwarz S, Horatagis AP and Gleim G. Effects of nonsteroidal antiinflammatory drugs on inflammatory bowel disease: a case-control study. Am. J. Gastroenterol. 2000; 95 (8): 1949-54. [DOI:10.1111/j.1572-0241.2000.02262.x]
5. Levenstein S, Prantera C, Varvo V, Scribano ML, Andreoli A, Luzi C and et al. Stress and exacerbation in ulcerative colitis: a prospective study of patients enrolled in remission. Am. J. Gastroenterol. 2000; 95 (5): 1213-20. [DOI:10.1111/j.1572-0241.2000.02012.x]
6. Almeida MG, Kiss DR, Zilberstein B, Quintanilha AG, Teixeira MG and Habr-Gama A. Intestinal mucosa-associated microflora in ulcerative colitis patients before and after restorative proctocolectomy with an ileoanal pouch. Diseases of the Colon & Rectum. 2008; 51 (7): 1113. [DOI:10.1007/s10350-008-9347-8]
7. Andersson RE, Olaison G, Tysk C and Ekbom A. Appendectomy and protection against ulcerative colitis. N. Engl. J. Med. 2001; 344 (11): 808-14. [DOI:10.1056/NEJM200103153441104]
8. Rezaie A, Parker RD and Abdollahi M. Oxidative stress and pathogenesis of inflammatory bowel disease: an epiphenomenon or the cause? DDS. 2007; 52 (9): 2015-21. [DOI:10.1007/s10620-006-9622-2]
9. Baumgart DC. The diagnosis and treatment of Crohn's disease and ulcerative colitis. Dtsch. Arztebl. Int. 2009; 106 (8): 123-33. [DOI:10.3238/arztebl.2009.0123]
10. Baumgart, D.C. and W.J. Sandborn, Crohn's disease. The Lancet 2012; 380 (9853): 1590-1605. [DOI:10.1016/S0140-6736(12)60026-9]
11. Gonzalez R, Rodriguez S, Romay CH, Ancheta O, Gonzalez A, Armesto J, Remirezd and Merino N. anti-inflammatory activity of phytocianin extract in acetic acid-induced colitis in rats. Pharmacological Res. January 1999; 39 (1): 55-59. [DOI:10.1006/phrs.1998.0409]
12. Ordas I. and et al. Ulcerative colitis. Lancet 2012; 380 (9853): 1606-19. [DOI:10.1016/S0140-6736(12)60150-0]
13. Cetinkaya A, Bulbuloglu E, Kurutas EB, Ciralik H, Kantarceken B and Buyukbese MA. Beneficial Effects of N-Acetylcysteine on Acetic Acid-Induced Colitis in Rats. Tohoku J. Exp. Med. 2005; 206 (2): 131-139. [DOI:10.1620/tjem.206.131]
14. Kornbluth A and Sachar DB. Ulcerative colitis practice guidelines in adults: American college of gastroenterology, practice parameters committee. Am. J. Gastroenterol. 2010; 105 (3): 501. [DOI:10.1038/ajg.2009.727]
15. Wallace K.L. and et al. Immunopathology of inflammatory bowel disease. World J. Gastroenterol: WJG, 2014; 20 (1): 6. [DOI:10.3748/wjg.v20.i1.6]
16. Travis SP. Review article: the management of mild to severe acute ulcerative colitis. Aliment Pharmacol Ther. 2004; 20 (4): 88-92. [DOI:10.1111/j.1365-2036.2004.02056.x]
17. Nikfar S, Rahimi R, Rezaie A and Abdollahi M. A meta-analysis of the efficacy of sulfasalazine in comparison with 5-aminosalicylates in the induction of improvement and maintenance of remission in patients with ulcerative colitis. Dig. Dis. Sci. 2009; 54 (6): 1157-70. [DOI:10.1007/s10620-008-0481-x]
18. Timmer A, McDonald JW and Macdonald JK. Azathioprine and 6-mercaptopurine for maintenance of remission in ulcerative colitis. Cochrane Database Syst Rev. 2007; (1): CD000478. [DOI:10.1002/14651858.CD000478.pub2]
19. Rahimi R, Nikfar S, Rezaie A and Abdollahi M. A meta-analysis of antibiotic therapy for active ulcerative colitis. Dig. Dis. Sci. 2007; 52 (11): 2920-5. [DOI:10.1007/s10620-007-9760-1]
20. Rahimi R, Nikfar S and Abdollahi M. Meta-analysis technique confirms the effectiveness of anti-TNF-alpha in the management of active ulcerative colitis when administered in combination with corticosteroids. Med. Sci. Monit. 2007; 13 (7): PI13-8.
21. Rahimi R, Nikfar S and Abdollahi M. A meta-analysis of the benefit of probiotics in maintaining remission of human ulcerative colitis: evidence for prevention of disease relapse and maintenance of remission. AMS 2008; 4: 185-190.
22. Burisch J. Occurrence, course and prognosis during the first year of disease in a European population-based inception cohort. Dan. Med. J. 2014; 61 (1): B4778-B4778.
23. Patil MV, Kandhare AD and Bhise SD. Anti - inflammatory effect of Daucus carota root on experimental colitis in rats. Int. J. Pharm. Pharm. Sci. 2012; 4 (1): 337-343.
24. Daren L, Nguyen D and Emiko Mizoguchi. "Animal models of ulcerative colitis and their application in drug research. DDDT. 2013; 7 (1): 1341-1357. [DOI:10.2147/DDDT.S40107]
25. Tanideh N, Masoumi S, Hosseinzadeh M, Safarpour AR, Erjaee H, Koohi-Hosseinabadi O and Rahimikazerooni S. Healing Effect of Pistacia atlantica Fruit Oil Extract in Acetic Acid-Induced Colitis in Rats. Iran. J. Med. Sci. 2014; 39 (6): 522-528.
26. Adegoke GA, Onasanwo SA, Eyarefe OD and Olaleye SB. Ameliorative effects of Musa spaientum peel extract on acetic acid-induced colitis in rat. JOBAZ. 2016; 77: 49-55. [DOI:10.1016/j.jobaz.2016.06.004]
27. Haghdoost F, Baradaran Mahdavi MM, Zandifar A, Sanei MH, Zolfaghari B, Javanmard SH. Pistacia atlantica Resin Has a Dose-Dependent Effect on Angiogenesis and Skin Burn Wound Healing in Rat. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013; 2013. [DOI:10.1155/2013/893425]
28. Tohidi M, Khayami M, Nejati V and Meftahizade H. Evaluation of antibacterial activity and wound healing of Pistacia atlantica and Pistacia khinjuk Evaluation of antibacterial activity and wound healing of Pistacia atlantica and Pistacia khinjuk. JMPR. 9 September, 2011; 5 (17): 4310-4314.
29. Hataminia AA, Abbaspour N, Daevishzadeh R. Antioxidant activity and phenolic profile of different part of Bene (Pistacia atlantica subsp. Kurdica) fruits. Food Chem. 2014; 145: 306-311. [DOI:10.1016/j.foodchem.2013.08.031]
30. Bozorgi M, Memariani Z, Mobli M, SalehiSurmaghi MH, Shams-Ardekani MH and Rahimi R. Five Pistacia species (P. vera, P. atlantica, P. terebinthus, P. khinjuk and P. lentiscus): A Review of Their Traditional Uses, Phytochemistry, and Pharmacology. Sci. World J. 2013; 2013. [DOI:10.1155/2013/219815]
31. Taran M, Mohebali M and Esmaeli J. In vivo Efficacy of Gum Obtain Pistacia Atlantica in Experimental Treatment of Cutaneous Leishmaniasis. IJPH. 2010; 39 (1): 36-41.
32. Bachir Gh and Benali M. Antimicrobial activity determination of the gum of Pistacia atlantica Desf. oil. AJMR. 2010; 4 (23): 2457-2460.
33. Hashemnia M, Nikousefat Z and Yazdani-Rostam M. Antidiabetic effect of Pistacia atlantica and Amygdalus scoparia in streptozotocin-induced diabetic mice. Comp Clin Path. November 2015; 24 (6): 1301-1306. [DOI:10.1007/s00580-015-2068-1]
34. Shialy Z, Zarrin M, Sadeghi Nejad B and Yusef Naanaie S. In vitro antifungal properties of Pistacia atlantica and olive extracts on different fungal species. Curr. Med. Mycol. 2015; 1 (4): 40-45. [DOI:10.18869/acadpub.cmm.1.4.40]
35. Memariani Z, Sharifzadeh M, Bozorgi M, Hajimahmoodi M, Farzaei M H, Gholami M, Siavoshi F and Saniee P. Protective effect of essential oil of Pistacia atlantica Desf. on peptic ulcer: role of α-pinene. JTCM. 2017 February 15; 37 (1): 57-63. [DOI:10.1016/S0254-6272(17)30027-4]
36. Gunaseelan V, Karthikeyan AK, Jotinkumar Singh O, Meetei UD, Krishna Pramodini Devi Kh and Rita S. Effect of Ficus hispida in inflammatory bowel disease in experimental animals. IJPSR. 2015; 6 (10): 4391-4397.
37. Khodadadi A, Mirshafeie A, Eslami M, Razavi A and Hekmat K. An investigation upon the effectiveness of LVA-7220 as an immunomodulator on chronic ulcerative colities in rats. Koomesh 2003; 4 (3): 47-54.
38. Williams K.L. and et al. Enhanced survival and mucosal repair after dextran sodium sulfate– induced colitis in transgenic mice that overexpress growth hormone. Gastroenterol. 2001; 120 (4): 925-937. [DOI:10.1053/gast.2001.22470]
39. Jagtap A.G., Shirke S.S., Phadke A.S. Effect of polyherbal formulation on experimental models of inflammatory bowel diseases. J. Ethnopharmacol. 2004; 90 (2): 195-204. [DOI:10.1016/j.jep.2003.09.042]
40. Ligumsky M. and et al. Enhanced thromboxane and prostacyclin production by cultured rectal mucosa in ulcerative colitis and its inhibition by steroids and sulfasalazine. Gastroenterol. 1981; 81 (3): 444-449. [DOI:10.1016/0016-5085(81)90594-1]
41. Lobos E.A., Sharon P. and Stenson W.F. Chemotactic activity in inflammatory bowel disease. DDS. 1987; 32 (12): 1380-1388. [DOI:10.1007/BF01296664]
42. Branski D., Sharon P. and Abrahamov A. Prostaglandins in disorders of the intestinal tract: A Review. JPGN. 1986; 5 (6): 853-860. [DOI:10.1097/00005176-198611000-00005]
43. Mai G, Seow W, Pier G, McCormack J and Thong Y. Suppression of lymphocyte and neutrophil functions by Pseudomonas aeruginosa mucoid exopolysaccharide (alginate): reversal by physicochemical, alginase, and specific monoclonal antibody treatments. Infection and Immunity 1993; 61 (2): 559-64. [DOI:10.1128/IAI.61.2.559-564.1993]
44. Goyal N, Rana A, Ahlawat A, V. Bijjem KR and Kumar P. Animal models of inflammatory bowel disease. Inflammopharmacol. 2014. [DOI:10.1007/s10787-014-0207-y]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
