سال 19، شماره 74 - ( 3-1399 )
سال 19 شماره 74 صفحات 324-310 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Zamani N, Heshmati M, Arbabi Bidgoli S. Genotoxicity assessment of Elaeagnus angustifolia L. fruit extract (senjed) nanocapsule by in vitro and in vivo methods. J. Med. Plants 2020; 19 (74) :310-324
URL: http://jmp.ir/article-1-2470-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-2470-fa.html
زمانی نگار، حشمتی معصومه، اربابی بیدگلی سپیده. ارزیابی سمیت ژنتیکی نانوکپسول عصاره سنجد (Elaeagnus angustifolia L.) به دو روش برون‌تنی و درون‌تنی. فصلنامه گياهان دارویی. 1399; 19 (74) :310-324
نگار زمانی1 
، معصومه حشمتی2 ، سپیده اربابی بیدگلی* 3
، معصومه حشمتی2 ، سپیده اربابی بیدگلی* 3
1- مرکز تحقیقات علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی تهران، تهران، ایران
2- گروه علوم سلولی و مولکولی، دانشکده علوم و فناوریهای نوین، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی تهران، تهران، ایران
3- گروه سمشناسی داروشناسی، دانشکده داروسازی و علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی تهران، تهران، ایران ،sepideharbabi@yahoo.com
2- گروه علوم سلولی و مولکولی، دانشکده علوم و فناوریهای نوین، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی تهران، تهران، ایران
3- گروه سمشناسی داروشناسی، دانشکده داروسازی و علوم دارویی، دانشگاه علوم پزشکی آزاد اسلامی تهران، تهران، ایران ،
چکیده: (2996 مشاهده)
مقدمه: اگرچه سنتز و مطالعات اولیه بر روی نانو کپسول سنجد دلالت بر اثربخشی آن در پوکی استخوان در مدل تجربی موش صحرایی داشته و با افزایش معنی‌دار سطح خونی کلسیم همراه بوده اما سمیت این نانو کپسول تاکنون مورد ارزیابی قرار نگرفته است. هدف: در این مطالعه سمیت ژنتیکی نانوکپسول سنجد با دو آزمون ایمز (برون‌تن) و میکرونوکلئوس (درون‌تن) ارزیابی شد. روش بررسی: جهت انجام آزمون ایمز، از دو سویه سالمونلاتیفی موریوم TA100 و TA98 و جهت آزمون میکرونوکلئوس از رت‌های نر و ماده، پس از تجویز 45 روزه خوراکی نانوکپسول سنجد با دوز µg/Kg 1000 صورت گرفت. بدین‌منظور لنفوسیت‌ها از طحال حیوانات تحت رژیم جدا شده و تعداد موارد میکرونوکلئوس در بین گروه‌های مورد و شاهد مقایسه شد. نتایج: علاوه بر اینکه نانوکپسول در آزمون ایمز فاقد هرگونه اثرات موتاژنیک بود، در مواجهه همزمان با سدیم آزاید، اثرات آنتی‌موتاژنیک برروی هر دو سویه سالمونلاتیفی موریوم TA100 و TA98 را نیز به وضوح نمایش داد و این یافته با کاهش معنی‌دار و وابسته به دوز تعداد کلونی در رقت‌های مختلف نانوکپسول سنجد و کنترل مثبت (سدیم آزاید) شناسایی شد (001/0 ≤ P). لیکن نتایج مطالعه در آزمون میکرونوکلئوس افزایش معنی‌دار تعداد میکرونوکلئوس، پل‌های نوکلئوپلاسمی و جوانه‌های هسته‌ای نسبت به گروه کنترل را در هر دو جنس نر و ماده نمایش داد (001/0 ≤ P). نتیجه‌گیری: با توجه به ارزش‌های درمانی نانو کپسول سنجد، بازنگری در ساختار نانو کپسول و تکرار مطالعه درون‌تن در دوزهای کمتر، پیش از انجام مطالعات کلینیکی این شکل اولیه دارویی ضرورت دارد.
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
گياهان دارویی
دریافت: 1397/12/8 | پذیرش: 1398/3/8 | انتشار: 1399/4/31
دریافت: 1397/12/8 | پذیرش: 1398/3/8 | انتشار: 1399/4/31
فهرست منابع
1. Hamidpour R, Hamidpour S, Hamidpour M, Shahlari M, Sohraby M, Shahlari N and Hamidpour R. Russian olive (Elaeagnus angustifolia L.): From a variety of traditional medicinal applications to its novel roles as active antioxidant, anti-inflammatory, anti-mutagenic and analgesic agent. J. Trad. Comp. Med. 2017; 7: 24-9. [DOI:10.1016/j.jtcme.2015.09.004]
2. Niknam F, Azadi A, Barzegar A, Faridi P, Tanideh N and Zarshenas. Phytochemistry and phytotherapeutic aspects of Elaeagnus angustifolia L. Curr. Drug. Discov. Tech. 2016; 13 (4): 199-210. [DOI:10.2174/1570163813666160905115325]
3. Motevalian M, Shiri M, Shiri S, Shiri Z and Shiri H. Anti-inflammatory activity of elaeagnus angustifolia fruit extract on rat paw edema. J. Bas. Clin. Phys. Pharm. 2017; 28 (4): 377-81. [DOI:10.1515/jbcpp-2015-0154]
4. Nikniaz Z, Ostadrahimi A, Mahdavi R, Ebrahimi AA and Nikniaz L. Effects of Elaeagnus angustifolia L. supplementation on serum levels of inflammatory cytokines and matrix metalloproteinases in females with knee osteoarthritis. Comp. Ther. Med. 2014; 22 (5): 864-9. [DOI:10.1016/j.ctim.2014.07.004]
5. Chen XY, Han JX, Liu YS, Hajiakber A and Yuan T. Chemical constituents from traditional uighur herbal medicine elaeagnus angustifolia flowers. Zhon. Zhong. Yao. Za. Zhi. 2018; 43 (9): 1749-53.
6. Greque de Morais M, Greque de Morais E, Vaz Bda S, Gonçalves CF, Lisboa C and Costa JA. Nanoencapsulation of the bioactive compounds of spirulina with a microalgal Biopolymer Coating. J. Nanosci. Nanotech. 2016; 16 (1): 81-91. [DOI:10.1166/jnn.2016.10899]
7. Pinheiro AC, Bourbon AI, Cerqueira MA, Maricato E, Nunes C, Coimbra MA and Vicente AA. Chitosan/fucoidan multilayer nanocapsules as a vehicle for controlled release of bioactive compounds. Carbo. Poly. 2015; 115: 1-9. [DOI:10.1016/j.carbpol.2014.07.016]
8. Bapat P, Ghadi R, Chaudhari D, Katiyar SS and Jain S. Tocophersolan stabilized lipid nanocapsules with high drug loading to improve the permeability and oral bioavailability of curcumin. Int. J. Pharm. 2016; 16 (1): 81-91.
9. Amin DR, Higginson CJ, Korpusik AB, Gonthier AR and Messersmith PB. Untemplated resveratrol-mediated polydopamine nanocapsule formation. ACS App. Mate. Inter. 2018; 10 (40): 34792-801. [DOI:10.1021/acsami.8b14128]
10. Esmaeili A and Niknam S. Characterization of nanocapsules containing Elaeagnus angustifolia L. extract prepared using an emulsion-diffusion process. Flav. Frag. J. 2013; 28 (5): 309-15. [DOI:10.1002/ffj.3164]
11. Esmaeili A and Niknam S. 2014. Preparation of polyamide nanocapsules of Elaeagnus angustifolia L. delivery with in vivo studies. Ind. Cro. Pro. 2014; 55: 49-55. [DOI:10.1016/j.indcrop.2014.01.053]
12. Dusinska M, Mariussen E, Rundén-Pran E, Hudecova AM, Elje E, Kazimirova A, El Yamani N, Dommershausen N, Tharmann J, Fieblinger D, Herzberg F, Luch A and Haase A. In vitro approaches for assessing the genotoxicity of nanomaterials. nanot. 2019; protocol : 83-122. [DOI:10.1007/978-1-4939-8916-4_6]
13. Alebouyeh F, Bidgoli SA, Ziarati P, Heshmati M and Qomi M. Mutagenicity assessment of drinking water in combination with flavored black tea bags: a cross sectional study in tehran. As. Pac. J. Can. Prev. 2015; 16 (17): 7479-84. [DOI:10.7314/APJCP.2015.16.17.7479]
14. Speit G, Zeller J and Neuss S. The in vivo or ex vivo origin of micronuclei measured in human biomonitoring studies. Muta. 2011; 26 (1): 107-10. [DOI:10.1093/mutage/geq061]
15. Chen XY, Han JX, Liu YS, Hajiakber A and Yuan T. Chemical constituents from traditional Uighur herbal medicine elaeagnus angustifolia flowers. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2018; 9 (43): 1749-53.
16. Hosseinzadeh H, Ramezani M and Namjo N. Muscle relaxant activity of Elaeagnus angustifolia L. fruit seeds in mice. J. Ethnopharmacol. 2003; 84 (2 - 3): 275-8. [DOI:10.1016/S0378-8741(02)00331-8]
17. Dabbaghmanesh MH, Noorafshan A, Talezadeh P, Tanideh N, Koohpeyma F, Iraji A, Bakhshayeshkaram M and Montazeri-Najafabady N. Stereological investigation of the effect of Elaeagnus angustifolia fruit hydroalcoholic extract on osteoporosis in ovariectomized rats. Avicenna J. Phytomed. 2017; 7 (3): 261-74.
18. Amereh Z, Hatami N, Shirazi FH, Gholami S, Hosseini SH, Noubarani M, Kamalinejad M, Andalib S, Keyhanfar F and Eskandari MR. Cancer chemoprevention by oleaster (Elaeagnus angustifoli L.) fruit extract in a model of hepatocellular carcinoma induced by diethylnitrosamine in rats. EXCLI J. 2017; 16: 1046-56.
19. Okmen G, Turkcan O, Ceylan O and Gork G. The antimicrobial activity of liquidambar orientalis mill. against food pathogens and antioxidant capacity of leaf extracts. Afr. J. Tradit. Complement Altern. Med. 2004; 11 (5): 28-32. [DOI:10.4314/ajtcam.v11i5.4]
20. Du H, Chen J, Tian S, Gu H, Li N, Sun Y, Ru J and Wang J. Extraction optimization, preliminary characterization and immunological activities in vitro of polysaccharides from Elaeagnus angustifolia L. pulp. Carbohydr Polym. 2016; 151: 348-57. [DOI:10.1016/j.carbpol.2016.05.068]
21. Talaei-Khozani T, Vojdani Z, Dehghani F, Heidari E, Kharazinejad E and Panjehshahin MR. Toxic effects of Elaeagnus angustifolia fruit extract on chondrogenesis and osteogenesis in mouse limb buds. Tokai J. Exp. Clin. Med. 2011; 6 (3): 63-70.
22. Torbati M, Asnaashari S and Heshmati Afshar F. Essential oil from flowers and leaves of Elaeagnus angustifolia (Elaeagnaceae): composition, radical scavenging and general toxicity activities. Adv. Pharm. Bull. 6 (2): 163-9. [DOI:10.15171/apb.2016.023]
23. Luo T, Gao L, Chen X, Xu K and Niu M. Genotoxicity of nanocarriers. Curr. Drug Metab. 2018; 19 (2): 110-23. [DOI:10.2174/1389200218666171031122346]
24. George JM, Magogotya M, Vetten MA, Buys AV and Gulumian M. From the cover: an investigation of the genotoxicity and interference of gold nanoparticles in commonly used in vitro mutagenicity and genotoxicity assays. Toxicol. Sci. 2017; 156 (1): 149-66. [DOI:10.1093/toxsci/kfw247]
25. Dalcin AJF, Vizzotto BS, Bochi GV, Guarda NS, Nascimento K, Sagrillo MR, Moresco RN, Schuch AP, Ourique AF and Gomes P. Nanoencapsulation of the flavonoid dihydromyricetin protects against the genotoxicity and cytotoxicity induced by cationic nanocapsules. Colloids Surf B Biointerfaces 2019; 73: 798-805. [DOI:10.1016/j.colsurfb.2018.10.066]
26. Okmen G and Turkcan O. A study on antimicrobial, antioxidant and antimutagenic activities of Elaeagnus angustifolia L. leaves. Afr. J. Tradit. Complement. Altern. Med. 2013; 11 (1): 16-20. [DOI:10.4314/ajtcam.v11i1.17]
27. Heshmati M, ArbabiBidgoli S, Khoei S, Rezayat SM and Parivar K. Mutagenic effects of nanosilver consumer products: a new approach to physicochemical properties. Iran. J. Pharm Res. 2015; 14 (4): 1171-80.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
