سال 20، شماره 80 - ( 9-1400 )
سال 20 شماره 80 صفحات 22-13 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Heydari F, Ghafarzadegan R, Mofasseri M, Ghasemi S V, Kashefi M, Hajiaghaee R et al . Phytochemical analysis and biological activities of essential oil and extract of Phlomis rigida Labill.. J. Med. Plants 2021; 20 (80) :13-22
URL: http://jmp.ir/article-1-3138-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-3138-fa.html
حیدری فرشته، غفارزادگان رضا، مفسری منصور، قاسمی سید وحید، کاشفی مهرداد، حاجی آقایی رضا و همکاران.. آنالیز فیتوشیمیایی و بررسی فعالیت‌های بیولوژیکی اسانس و عصاره گیاه گوش بره طناز. فصلنامه گياهان دارویی. 1400; 20 (80) :13-22
فرشته حیدری1 
، رضا غفارزادگان2 ، منصور مفسری3 ، سید وحید قاسمی2 ، مهرداد کاشفی2 ، رضا حاجی آقایی2 ، سعید توکلی* 4
، رضا غفارزادگان2 ، منصور مفسری3 ، سید وحید قاسمی2 ، مهرداد کاشفی2 ، رضا حاجی آقایی2 ، سعید توکلی* 4
1- گروه شیمی آلی و فیتوشیمی، دانشکده شیمی، دانشگاه خوارزمی، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی، پژوهشکده گیاهان دارویی، جهاد دانشگاهی، کرج، ایران
3- گروه شیمی، دانشکده علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی، پژوهشکده گیاهان دارویی، جهاد دانشگاهی، کرج، ایران ، Stavakoli@imp.ac.ir
2- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی، پژوهشکده گیاهان دارویی، جهاد دانشگاهی، کرج، ایران
3- گروه شیمی، دانشکده علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی، پژوهشکده گیاهان دارویی، جهاد دانشگاهی، کرج، ایران ، Stavakoli@imp.ac.ir
چکیده: (4817 مشاهده)
مقدمه: جنس گوش بره متعلق به خانواده نعناییان (Lamiaceae) است. حدود 10 گونه از این جنس در بین بیش از 100 گونه آن بومی ایران هستند. Phlomis rigida Labill. ، بر اساس مطالعات می‌تواند به عنوان عامل ضدمیکروبی، ضدالتهاب، التیام‌دهنده زخم و آنتی‌اکسیدان در تحقیقات دارویی استفاده شود. هدف: هدف از این مطالعه بررسی ترکیبات موجود در اسانس و عصاره برگ و گل و همچنین بررسی فعالیت ضداکسیدانی، ضدباکتریایی و سمیت سلولی این گیاه در ایران می‌باشد. روش بررسی: با استفاده از کروماتوگرافی گازی - اسپکتروسکوپی جرمی اسانس برگ و گل به منظور ارزیابی ترکیبات موجود در اسانس ارزیابی شد. خاصیت ضداکسیدانی عصاره و اسانس برگ و گل گیاه با استفاده از روش DPPH مورد مطالعه قرار گرفت. خاصیت ضدباکتریایی عصاره و اسانس برگ و گل گیاه با استفاده از روش غلظت بازدارنده حداقل بر روی چند نوع ضدباکتریایی مختلف ارزیابی شد. خاصیت سمیت سلولی عصاره و اسانس برگ و گل گیاه توسط آزمون میگوی آب شور مورد سنجش قرار گرفت. همچنین اثرات بازدارنده رشد سلولی عصاره‌های متانولی برگ و گل گیاه با غلظت‌های مختلف بر روی سلول‌های 7-MCF ، MDBK ،29-HT و 549-A انجام گرفت. نتایج: تجزیه و تحلیل اسانس گیاه منجر به شناسایی 34 ترکیب شده که ترکیبات عمده آن به ترتیب بتا- اوسیمن (25/6%)، ایزوبورنیل استات (16/6%)، ترانس- وربنول (12/6%) و آلفا- پینن (7/6%) بودند. بررسی عصاره متانولی برگ گیاه منجر به جداسازی و شناسایی ترکیبات لوتئولین، لوتئولین 7-او-گلیکوزید و رزمارینیک اسید شد. همچنین بررسی‌های انجام گرفته بر روی اسانس گل گیاه نشان داد که گیاه خواص ضدباکتریایی با هاله عدم رشد 16 میلی‌متر بر روی باکتری پروتئوس ولگاریس دارد. نتیجه‌گیری: نتایج این مطالعه نشان داد که اثر ضد باکتریایی اسانس P. rigida می‌تواند به دلیل وجود مونوترپن‌های آن باشد.
واژه‌های کلیدی: گوش بره طناز، ضدباکتریایی، آنتیاکسیدانی، سمیت سلولی، لوتئولین، لوتئولین 7 -او-گلوکوزید، رزمارینیک اسید
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
فارماكوگنوزی و فارماسيوتيكس
دریافت: 1400/3/27 | پذیرش: 1400/7/27 | انتشار: 1400/9/10
دریافت: 1400/3/27 | پذیرش: 1400/7/27 | انتشار: 1400/9/10
فهرست منابع
1. Hamamouchi M. Medicinal plants in Morocco: Traditional use, marketing, and strategies for conservation and increasing value. Esperance Med. 2002; 9: 454-8.
2. Rechinger K. Flora Iranica Graz-Austeria, Akademische Druck-U. Verlagsantalt. 1982: 439-40.
3. Saracoglu I, Kojima K, Harput US and Ogihara Y. A new phe-nylethanoid glycoside from Phlomis pungens Willd. var. pun-gens. Chem. Pharm. Bull. (Tokyo). 1998; 46(4): 726-7. [DOI:10.1248/cpb.46.726]
4. Sarkhail P, Abdollahi M and Shafiee A. Antinociceptive effect of Phlomis olivieri Benth., Phlomis anisodonta Boiss. and Phlo-mis persica Boiss. total extracts. Pharmacol. Res. 2003; 48(3): 263-6. [DOI:10.1016/S1043-6618(03)00151-8]
5. Kirmizibekmez H, Montoro P, Piacente S, Pizza C, Donmez A and Calis I. Identification by HPLC-PAD-MS and quantifi-cation by HPLC-PAD of phenylethanoid glycosides of five Phlomis species. Phytochem. Anal. 2005; 16(1): 1-6. [DOI:10.1002/pca.802]
6. Couladis M, Tanimanidis A, Tzakou O, Chinou IB and Harvala C. Essential oil of Phlomis lanata growing in Greece: chemi-cal composition and antimicrobial activity. Planta Med. 2000; 66(7): 670-2. [DOI:10.1055/s-2000-8631]
7. Kirmizibekmez H, Calis I, Perozzo R, Brun R, Donmez AA, Linden A, Rüedi P, and Tasdemir D. Inhibiting activities of the secondary metab-olites of Phlomis brunneogaleata against parasitic protozoa and plasmodial enoyl-ACP Reductase, a crucial enzyme in fatty acid biosynthesis. Planta Med. 2004; 70(8): 711-7. [DOI:10.1055/s-2004-827200]
8. Toroğlu S and Çenet M. Comparison of antimicrobial activities of essential oil and solvent extracts of endemic Phlomis op-positiflora Boiss. & Hausskn. from Turkey. Pakistan J. Zool. 2013; 45(2): 475-82.
9. Kamel MS, Mohamed KM, Hassanean HA, Ohtani K, Kasai R and Yamasaki K. Iridoid and megastigmane glycosides from Phlomis aurea. Phytochem. 2000; 55(4): 353-7. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)00331-9]
10. Kyriakopoulou I, Magiatis P, Skaltsounis A-L, Aligiannis N and Harvala C. Samioside, a New Phenylethanoid Glycoside with Free-Radical Scavenging and Antimicrobial Activities from Phlomis samia. Journal of Natural Products 2001; 64(8): 1095-7. [DOI:10.1021/np010128+]
11. Shin T-Y and Lee J-K. Effect of Phlomis umbrosa root on mast cell-dependent immediate-type allergic reactions by anal therapy. Immunopharmacology and Immunotoxicology 2003; 25(1): 73-85. [DOI:10.1081/IPH-120018285]
12. Katagiri M, Ohtani K, Kasai R, Yamasaki K, Yang C-R and Tan-aka O. Diterpenoid glycosyl esters from Phlomis younghus-bandii and P. medicinalis roots. Phytochem. 1994; 35(2): 439-42. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)94777-0]
13. Çalış Ih and Kırmızıbekmez H. Glycosides from Phlomis lunari-ifolia. Phytochem. 2004; 65(18): 2619-25. [DOI:10.1016/j.phytochem.2004.04.038]
14. Davis PH and Tan K. Flora of Turkey and the Aegean islands: Edinburgh University Press; 1988.
15. Sarikaya A and Fakir H. Effects of reaping time on volatile components of natural Phlomis rigida Labill. and Phlomis monocephala PH Davis in Turkey. Applied Ecology and Environmental Res. 2019; 17(2): 1923-8. doi: 10.15666/aeer/1702_19231928. [DOI:10.15666/aeer/1702_19231928]
16. Demirci B, Baser KHC and Dadandi MY. Composition of the Essential Oils of Phlomis rigida Labill. and P. samia L. J. Essential Oil Res. 2006; 18(3): 328-31. [DOI:10.1080/10412905.2006.9699103]
17. Okur ME, Karadağ AE, Özhan Y, Sipahi H, Ayla Ş, Daylan B, Kültür Ş, Demirci B, and Demirci F. Anti-inflammatory, analgesic and in vivo-in vitro wound healing potential of the Phlomis rigida Labill. extract. J. Ethnopharmacol. 2021; 266: 113408. doi: 10.1016/j.jep.2020.113408. [DOI:10.1016/j.jep.2020.113408]
18. Sönmez PE, Kirbag S, and Çakilcioglu U. Reviewing Phlomis rigida Labill from Turkey as a antimicrobial efficacy. Sakarya Üniv Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi. 2020; 24(6): 1265-71. doi: 10.16984/saufenbilder.769854. [DOI:10.16984/saufenbilder.769854]
19. Adams RP. Identification of essential oil components by gas chromatography/mass spectrometry: Allured publishing corporation Carol Stream, IL; 2007.
20. Tavakoli S, Yassa N, Delnavazi M, Akhbari M, Hadjiakhoondi A, Hajimehdipoor H, Khalighi-Sigaroodi F, and Hajiaghaee R. Chemical composition and biological activities of the essential oils from different parts of Ferulago trifida Boiss. J. Essent. Oil Res. 2017; 29(5): 407-19. doi: 10.1080/10412905.2017. 1313178. [DOI:10.1080/10412905.2017.1313178]
21. Akhbari M, Delnavazi M-R, Karimi M, Almasi R and Tavakoli S. SDE-prepared Oil Analysis and Evaluation of Antioxidant and Antibacterial Potentials of Varthemia persica DC. Pharmaceutical Sci. 2014; 20(2): 70-6.
22. Meyer B, Ferrigni N, Putnam J, Jacobsen L, Nichols D and McLaughlin JL. Brine shrimp: a convenient general bioassay for active plant constituents. Planta med. 1982; 45(5): 31-4. doi: 10.1055/s-2007-971236. [DOI:10.1055/s-2007-971236]
23. M.C. Alley, D.A. Scudiero, A. Monks, M.L. Hursey, M.J. Czerwinski, D.L. Fine, B.J. Abbott, J.G. Mayo, R.H. Shoemaker and M.R. Boyd, Feasibility of drug screening with panels of human tumor cell lines using a microculture tetrazolium assay. Cancer Res. 1988; 48: 589-601.
24. Goodarzi S, Tabatabaei MJ, Mohammad Jafari R, Shemirani F, Tavakoli S, Mofasseri M and Tofighi Z. Cuminum cyminum fruits as source of luteolin- 7-O-glucoside, potent cytotoxic flavonoid against breast cancer cell lines. Nat. Prod. Res. 2020 Jun; 34(11): 1602-1606. [DOI:10.1080/14786419.2018.1519824]
25. Akoury E. Isolation and Structural Elucidation of Rosmarinic Acid by Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy, Am. Res. J. Chem. 2017; 2: 17-23.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
