سال 18، شماره 72 - ( 8-1398 )
سال 18 شماره 72 صفحات 159-149 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hajizadeh Moghadam A, Parhizkar M, Sirafi R, Khanjani Jelodar S. Therapeutic Effects of Hesperetin and Nano Hesperetin on Ketamine-Induced Hepatotoxicity. J. Med. Plants 2019; 18 (72) :149-159
URL: http://jmp.ir/article-1-1959-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-1959-fa.html
حاجی‌زاده مقدم اکبر، پرهیزگار مریم، صیرفی رضا، خانجانی جلودار صدیقه. اثرات درمانی هسپرتین و نانوهسپرتین بر مسمومیت کبدی القاء شده با کتامین. فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 18 (72) :149-159
1- دانشیار فیزیولوژی جانوری، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران ، a.hajizadeh@umz.ac.ir
2- کارشناسی ارشد فیزیولوژی جانوری، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
3- استادیار گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تخصصی فناوری‌های نوین آمل، آمل، ایران
4- دانشجوی دکتری فیزیولوژی جانوری، گروه زیست جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
2- کارشناسی ارشد فیزیولوژی جانوری، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
3- استادیار گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تخصصی فناوری‌های نوین آمل، آمل، ایران
4- دانشجوی دکتری فیزیولوژی جانوری، گروه زیست جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
چکیده: (1548 مشاهده)
مقدمه: کتامین سبب استرس اکسیداتیو و آسیب کبدی می‌شود. هسپرتین نقش مهمی در پیشگیری از فرآیندهای التهابی و استرس اکسیداتیو در بدن دارد.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثرات حفاظتی هسپرتین و نانوذره آن بر آسیب کبدی ناشی از کتامین در موش سوری است.
روش بررسی: در این پژوهش 30 سر موش سوری نر به شش گروه کنترل، مسموم (10 میلی‌گرم بر کیلوگرم کتامین برای 10 روز درون صفاقی) و گروه‌های مسموم درمان شده با هسپرتین و نانوهسپرتین (10 و 20 میلی‌گرم بر کیلوگرم برای چهار هفته بعد از تزریق کتامین) تقسیم شدند. در پایان، میزان سطوح مالون دی آلدهید (MDA)، گلوتاتیون (GSH) و فعالیت آنزیم‌های کاتالاز (CAT)، سوپراکسیددیسموتاز (SOD)، گلوتاتیون پراکسیداز (GPX)، گلوتاتیون ردوکتاز (GRX) و تغییرات بافتی کبد بررسی شد.
نتایج: سطح GSH و فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی در کبد موش‌های دریافت‌کننده کتامین به طور معنی‌داری کاهش یافت و هسپرتین و فرم نانو آن سطح GSH و فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی را به طور معنی‌داری افزایش داده است. در مقابل، سطح MDA در کبد موش مسموم شده با کتامین به طور قابل توجهی افزایش یافته است و نانو هسپرتین، لیپید پراکسیداسیون ناشی از کتامین را مهار می‌کند (01/0 P <). کتامین همچنین به طور قابل توجهی (05/0P <) باعث کاهش تعداد و قطر هپاتوسیت‌ها، قطر هسته هپاتوسیت‌ها و قطر سینوزوئیدها شد. درمان با هسپرتین و نانوهسپرتین تعداد هپاتوسیت‌ها (001/0P <) و قطر سینوزوئیدها (05/0P <) را به طور معنی‌داری افزایش داد.
نتیجه‌گیری: یافته‌های این پژوهش نشان می‌دهد هسپرتین و بویژه نانوذره آن بواسطه خاصیت آنتی‌اکسیدانی، موجب حفاظت کبد در برابر استرس اکسایشی ناشی از کتامین می‌شود.
هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثرات حفاظتی هسپرتین و نانوذره آن بر آسیب کبدی ناشی از کتامین در موش سوری است.
روش بررسی: در این پژوهش 30 سر موش سوری نر به شش گروه کنترل، مسموم (10 میلی‌گرم بر کیلوگرم کتامین برای 10 روز درون صفاقی) و گروه‌های مسموم درمان شده با هسپرتین و نانوهسپرتین (10 و 20 میلی‌گرم بر کیلوگرم برای چهار هفته بعد از تزریق کتامین) تقسیم شدند. در پایان، میزان سطوح مالون دی آلدهید (MDA)، گلوتاتیون (GSH) و فعالیت آنزیم‌های کاتالاز (CAT)، سوپراکسیددیسموتاز (SOD)، گلوتاتیون پراکسیداز (GPX)، گلوتاتیون ردوکتاز (GRX) و تغییرات بافتی کبد بررسی شد.
نتایج: سطح GSH و فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی در کبد موش‌های دریافت‌کننده کتامین به طور معنی‌داری کاهش یافت و هسپرتین و فرم نانو آن سطح GSH و فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی را به طور معنی‌داری افزایش داده است. در مقابل، سطح MDA در کبد موش مسموم شده با کتامین به طور قابل توجهی افزایش یافته است و نانو هسپرتین، لیپید پراکسیداسیون ناشی از کتامین را مهار می‌کند (01/0 P <). کتامین همچنین به طور قابل توجهی (05/0P <) باعث کاهش تعداد و قطر هپاتوسیت‌ها، قطر هسته هپاتوسیت‌ها و قطر سینوزوئیدها شد. درمان با هسپرتین و نانوهسپرتین تعداد هپاتوسیت‌ها (001/0P <) و قطر سینوزوئیدها (05/0P <) را به طور معنی‌داری افزایش داد.
نتیجه‌گیری: یافته‌های این پژوهش نشان می‌دهد هسپرتین و بویژه نانوذره آن بواسطه خاصیت آنتی‌اکسیدانی، موجب حفاظت کبد در برابر استرس اکسایشی ناشی از کتامین می‌شود.
نوع مطالعه: پژوهشی |
دریافت: 1396/9/27 | پذیرش: 1397/6/21 | انتشار: 1398/8/6
دریافت: 1396/9/27 | پذیرش: 1397/6/21 | انتشار: 1398/8/6
فهرست منابع
1. Domino EF, Chodoff P and Corssen G. Pharmacologic effects of CI‐581, a new dissociative anesthetic, in man. Clin. Pharmacol. Ther. 1965; 6: 279-291. [DOI:10.1002/cpt196563279]
2. Cvrček P. Side effects of ketamine in the long-term treatment of neuropathic pain. Pain Medicine 2007; 9 (2): 253-257. [DOI:10.1111/j.1526-4637.2007.00314.x]
3. Noppers IM, Niesters M, Aarts LP, Bauer MC, Drewes AM, Dahan A and Sarton EY. Drug-induced liver injury following a repeated course of ketamine treatment for chronic pain in CRPS type 1 patients: a report of 3 cases. Pain. 2011; 152: 2173-2178. [DOI:10.1016/j.pain.2011.03.026]
4. Venâncio C, Antunes L, Félix L, Rodrigues P, Summavielle T and Peixoto F. Chronic ketamine administration impairs mitochondrial complex I in the rat liver. Life Sci. 2013; 93: 464-470. [DOI:10.1016/j.lfs.2013.08.001]
5. Patlevič P, Vašková J, Švorc Jr P, Vaško L and Švorc P. Reactive oxygen species and antioxidant defense in human gastrointestinal diseases. Integr. Med. 2016; 5: 250-258. [DOI:10.1016/j.imr.2016.07.004]
6. Kalkan Y, Tomak Y, Altuner D, Tumkaya L, Bostan H, Yilmaz A, ... and Turan A. Hepatic effects of ketamine administration for 2 weeks in rats. Human & Experimental Toxicol. 2014; 33 (1): 32-40. [DOI:10.1177/0960327112472990]
7. Asadi-Samani M, Kafash-Farkhad N, Azimi N, Fasihi A, Alinia-Ahandani E and Rafieian-Kopaei M. Medicinal plants with hepatoprotective activity in Iranian folk medicine. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2015; 5: 146-157. [DOI:10.1016/S2221-1691(15)30159-3]
8. Babukumar S, Vinothkumar V, Velu P, Ramachandhiran D and Ramados Nirmal M. Molecular effects of hesperetin, a citrus flavanone on7, 12-dimethylbenz (a) anthracene induced buccal pouch squamous cell carcinoma in golden Syrian hamsters. Arch. Physiol. Biochem. 2017; 123 (4): 265-278. [DOI:10.1080/13813455.2017.1317815]
9. Parhiz H, Roohbakhsh A, Soltani F, Rezaee R and Iranshahi M. Antioxidant and anti‐inflammatory properties of the citrus flavonoids hesperidin and hesperetin: an updated review of their molecular mechanisms and experimental models. Phytother. Res. 2015; 29: 323-331. [DOI:10.1002/ptr.5256]
10. Kiasalari Z, Khalili M, Baluchnejadmojarad T, Roghani M. Protective effect of oral hesperetin against unilateral striatal 6-hydroxydopamine damage in the rat. Neurochem. Res. 2016; 41: 1065-1072. [DOI:10.1007/s11064-015-1796-6]
11. Shimouchi A, Yokota H, Ono S, Matsumoto C, Tamai T, Takumi H, Narayanan SP, Kimura S, Kobayashi H, Caldwell RB and Nagaoka T. Neuroprotective effect of water-dispersible hesperetin in retinal ischemia reperfusion injury. Jpn. J. Ophthalmol. 2016; 60: 51-61. [DOI:10.1007/s10384-015-0415-z]
12. Barreca D, Laganà G, Toscano G, Calandra P, Kiselev MA, Lombardo D and Bellocco E. The interaction and binding of flavonoids to human serum albumin modify its conformation, stability and resistance against aggregation and oxidative injuries. Biochim. Biophys. Acta. 2017; 1861: 3531-3539. [DOI:10.1016/j.bbagen.2016.03.014]
13. Roohbakhsh A, Parhiz H, Soltani F, Rezaee R and Iranshahi M. Neuropharmacological properties and pharmacokinetics of the citrus flavonoids hesperidin and hesperetin-a mini-review. Life Sci. 2014; 113: 1-6. [DOI:10.1016/j.lfs.2014.07.029]
14. dos Passos Menezes P, Frank LA, dos Santos Lima B, de Carvalho YM, Serafini MR, Quintans-Júnior LJ, Pohlmann AR, Guterres SS and de Souza Araújo AA. hesperetin-loaded lipid-core nanocapsules in polyamide: a new textile formulation for topical drug delivery. Int. J. Nanomed. 2017; 12: 2069. [DOI:10.2147/IJN.S124564]
15. Gurushankar K, Nazeer SS, Jayasree RS and Krishnakumar N. Evaluation of antitumor activity of hesperetin-loaded nanoparticles against DMBA-induced oral carcinogenesis based on tissue autofluorescence spectroscopy and multivariate analysis. J. Fluoresc. 2015; 25: 931-939. [DOI:10.1007/s10895-015-1575-4]
16. Jeevanandam J, San Chan Y and Danquah MK. Nano-formulations of drugs: recent developments, impact and challenges. Biochimie. 2016; 128: 99-112. [DOI:10.1016/j.biochi.2016.07.008]
17. Kakran M, Sahoo GN and Li L. Fabrication of nanoparticles of silymarin, hesperetin and glibenclamide by evaporative precipitation of nanosuspension for fast dissolution. Pharm. Anal. Acta. 2015; 6: 2. [DOI:10.4172/2153-2435.1000326]
18. Cvrček P. Side effects of ketamine in the long-term treatment of neuropathic pain. Pain Medicine 2007; 9 (2): 253-257. [DOI:10.1111/j.1526-4637.2007.00314.x]
19. Moghaddam A.H. and Zare M. Neuroprotective effect of hesperetin and nano-hesperetin on recognition memory impairment and the elevated oxygen stress in rat model of Alzheimer's disease. Biomedicine & Pharmacotherapy 2018; 97: 1096-1101. [DOI:10.1016/j.biopha.2017.11.047]
20. Genet S, Kale RK and Baquer NZ. Alterations in antioxidant enzymes and oxidative damage in experimental diabetic rat tissues: effect of vanadate and fenugreek (Trigonella foenum graecum). Mol. Cell. Biochem. 2002; 236: 7-12.
21. Fukuzawa K and Tokumurai A. Glutathione peroxidase activity in tissues of vitamin E-deficient mice. J. Nutr. Sci. Vitaminol. 1976; 22: 405-407. [DOI:10.3177/jnsv.22.405]
22. Sharma M and Gupta YK. Chronic treatment with Trans resveratrol prevents intracerebroventricular streptozotocin induced cognitive impairment and oxidative stress in rats. Life Sci. 2002; 71: 2489-2498. [DOI:10.1016/S0024-3205(02)02083-0]
23. Romero FJ, Romá J, Bosch-Morell F, Romero B, Segura-Aguilar J, Llombart-Bosch A and Ernster L. Reduction of brain antioxidant defense upon treatment with butylated hydroxyanisole (BHA) and Sudan III in Syrian golden hamster. Neurochem. Res. 2000; 25: 389-393. [DOI:10.1023/A:1007549222553]
24. Kokkinou M, Ashok AH and Howes OD. The effects of ketamine on dopaminergic function: meta-analysis and review of the implications for neuropsychiatric disorders. Mol. Psychiatry. 2018; 23 (1): 59. [DOI:10.1038/mp.2017.190]
25. Dinis-Oliveira RJ. Metabolism and metabolomics of ketamine: a toxicological approach. J. Forensic Sci. 2017; 2: 2-10. [DOI:10.1080/20961790.2017.1285219]
26. Venâncio C, Antunes L, Félix L, Rodrigues P, Summavielle T and Peixoto F. Chronic ketamine administration impairs mitochondrial complex I in the rat liver. Life Sci. 2013; 93: 464-470. [DOI:10.1016/j.lfs.2013.08.001]
27. Abdel-Salam OM, Youness ER, Mohammed NA, Omara EA and Sleem AA. Effect of ketamine on oxidative stress following lipopolysaccharide administration. Comp. Clin. Path. 2013; 24: 53-63. [DOI:10.1007/s00580-013-1854-x]
28. Wang J, Zhu H, Yang Z and Liu Z. Antioxidative effects of hesperetin against lead acetate-induced oxidative stress in rats. Indian J. Pharmacol. 2013; 45: 395. [DOI:10.4103/0253-7613.115015]
29. Miler M, Živanović J, Ajdžanović V, Oreščanin-Dušić Z, Milenković D, Konić-Ristić A, Blagojević D, Milošević V and Šošić-Jurjević B. Citrus flavanones naringenin and hesperetin improve antioxidant status and membrane lipid compositions in the liver of old-aged Wistar rats. Exp. Gerontol. 2016; 84: 49-60. [DOI:10.1016/j.exger.2016.08.014]
30. Shete G, Pawar YB, Thanki K, Jain S and Bansal AK. Oral bioavailability and pharmacodynamic activity of hesperetin nanocrystals generated using a novel bottom-up technology. Mol. Pharm. 2015; 12: 1158-1170. [DOI:10.1021/mp5008647]
31. Monfared AL and Salati AP. Histomorphometric and biochemical studies on the liver of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) after exposure to sublethal concentrations of phenol. Toxicol. Ind. Health. 2013; 29: 856-861. [DOI:10.1177/0748233712451765]
32. Braunbeck T, Storch V and Bresch H. Species-specific reaction of liver ultrastructure in zebrafish (Brachydanio rerio) and trout (Salmo gairdneri) after prolonged exposure to 4-chloroaniline. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1990; 19: 405-418. [DOI:10.1007/BF01054986]
33. Ghosh D, Choudhury ST, Ghosh S, Mandal AK, Sarkar S, Ghosh A, Saha KD and Das N. Nanocapsulated curcumin: oral chemopreventive formulation against diethylnitrosamine induced hepatocellular carcinoma in rat. Chem. Biol. Interact. 2012; 195: 206-214. [DOI:10.1016/j.cbi.2011.12.004]
34. Ross SA, Srinivas PR, Clifford AJ, Lee SC, Philbert MA and Hettich RL. New technologies for nutrition research. J. Nutr. 2004; 134: 681-685. [DOI:10.1093/jn/134.3.681]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
