سال 20، شماره 80 - ( 9-1400 )
سال 20 شماره 80 صفحات 33-23 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Habibzade A, Moshtaghi N, Malekzadeh-Shafaroudi S. Phytochemical investigation among different populations of Papaver bracteatum Lindl. using ultrasonic - assisted extraction method followed by HPLC analysis. J. Med. Plants 2021; 20 (80) :23-33
URL: http://jmp.ir/article-1-3140-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-3140-fa.html
حبیب‌زاده علیرضا، مشتاقی نسرین، ملک‌زاده شفارودی سعید. بررسی فیتوشیمیایی جمعیت‌های مختلف خشخاش کبیر با استفاده از روش استخراج با امواج فراصوت و آنالیز کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا. فصلنامه گياهان دارویی. 1400; 20 (80) :23-33
1- دانشجوی دکتری بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
2- عضو هیات علمی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران ،moshtaghi@um.ac.ir
3- عضو هیات علمی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
2- عضو هیات علمی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران ،
3- عضو هیات علمی گروه بیوتکنولوژی و به نژادی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
چکیده: (2584 مشاهده)
مقدمه: گیاه خشخاش کبیر پیشینه طولانی به عنوان منبع آلکالوئیدهای طبیعی دارد. در میان گونه‌های خشخاش، این گونه می‌تواند به عنوان منبع غنی تبائین در نظر گرفته شود. هدف: هدف از این مطالعه بررسی میزان تبائین در اندام‌های مختلف جمعیت‌های متفاوت خشخاش کبیر بود. روش بررسی: هفت جمعیت از خشخاش کبیر از پنج ناحیه مختلف جغرافیایی شامل دماوند (رینه، آب اسک)، چالوس (یوش، پل زنگوله)، مهاباد، مشگین شهر و زنجان (تهم) انتخاب و میزان تبائین در آنها بررسی شد. استخراج تبائین با استفاده از روش امواج فراصوتی انجام پذیرفت. پارامترهای تاثیرگذار مانند pH، حجم حلال استخراجی، دمای استخراج و زمان آن، تکرار چرخه‌های استخراج و همچنین سایز ذرات، مورد بررسی قرار گرفت و شرایط بهینه برای رسیدن به بیشترین کارایی تعیین شد. همچنین ارتباط فنولوژی گیاه و میزان تبائین در دوره رشدی قبل از گلدهی و گلدهی مورد بررسی قرار گرفت. روش بهبود یافته استخراج با امواج فراصوت در این مطالعه به همراه آنالیز با دستگاه کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا برای آنالیز کمی به کار برده شد. نتایج: میزان تبائین در اندام‌های مختلف و جمعیت‌های مختلف متفاوت بود. میزان تبائین در کپسول در محدوده 0/9 -1/4 درصد (بر اساس ماده خشک) و در ساقه این گیاه 0/1 -0/45 درصد بود. بیشترین میزان تبائین در کپسول‌های جمع‌آوری شده از مهاباد بود. نتیجه‌گیری: استخراج در این روش منجر به حصول تبائین با خلوص بالا از گیاه خشخاش کبیر می‌شود. در نهایت یک پروفایل جامع از میزان تبائین در جمعیت‌های مختلف خشخاش کبیر در ایران به دست آمد.
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
گياهان دارویی
دریافت: 1400/3/29 | پذیرش: 1400/8/15 | انتشار: 1400/9/19
دریافت: 1400/3/29 | پذیرش: 1400/8/15 | انتشار: 1400/9/19
فهرست منابع
1. Karimi M and Raofie F. Micronization of vincristine extracted from Catharanthus roseus by expansion of supercritical fluid solution. J. Supercrit Fluid. 2019; 146: 172-179. [DOI:10.1016/j.supflu.2019.01.021]
2. Ma Y, Cheng J, Inanaga S and Shui J. Induction and inhibition of Striga hermonthica (Del.) Benth. germination by extracts of traditional Chinese medicinal herbs. J. Agron. 2004; 96: 1349-1356. [DOI:10.2134/agronj2004.1349]
3. Lavie D, Rotman J, Levy A and Palevitch D. A rapid quantitative method for the determination of thebaine in Papaver bracteatum. Phytochem. 1979; 18: 2011-2013. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)82722-3]
4. Foroozandeh-Shahraki A, Mehrafarin A, Akhondzadeh S, Naghdi Badi H, Qaderi A, Hajiaghaee R, Khalighi-Sigaroodi F and Ghorbani Nahooji M. Analytical Review on Persian Poppy (Papaver bracteatum Lindl.) as a Native and Economical Medicinal Plant. J. M. Plants. 2013; 12: 1-12.
5. Qavami N, Azizi M, Yazdian F, Qaderi A and Nemati H. Effective Induction of Hairy Roots in Persian Poppy (Papaver bracteatum Lindl.) Using Sonication Method. J. M. Plants 2018; 17: 73-82.
6. Goldblatt P. Biosystematic studies in Papaver section Oxytona. Pascal and Francis Bibliographic Database 1974; 61: 264-294. [DOI:10.2307/2395056]
7. Meshulam H and Lavie D. The alkaloidal constituents of Papaver bracteatum Arya II. Phytochem. 1980; 19: 2633-2635. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)83934-5]
8. Sharghi N and Lalezari I. Papaver bracteatum Lindl., a highly rich source of thebaine. Nature. 1967; 213: 1244-1244. [DOI:10.1038/2131244a0]
9. Jovanov P, Petrin-Miličević M, Radosavljević-Stevanović N, Vraneš M, Belić S, Sakač M, Nikolov J and Gadžurić S. Rapid Determination of the Primary Alkaloids in Illicit Heroin by High-Performance Liquid Chromatography with Tandem Mass Spectrometry (HPLC-MS/MS). Anal. Lett.. 2020; 54: 1224-1232. [DOI:10.1080/00032719.2020.1798454]
10. Paul B. D, Dreka C, Knight E. S and Smith M. L. Gas chromatographic/mass spectrometric detection of narcotine, papaverine, and thebaine in seeds of Papaver somniferum. Planta Med. 1996; 62: 544-547. [DOI:10.1055/s-2006-957966]
11. Barnett N, Hindson B, Lewis S and Purcell S. Determination of codeine, 6-methoxycodeine and thebaine using capillary electrophoresis with tris (2, 2′-bipyridyl) ruthenium (II) chemiluminescence detection. Anal Commun. 1988; 35: 321-324. [DOI:10.1039/a805955a]
12. Valadbeigi Y, Ilbeigi V and Mirsharifi M. S. Mechanism of atmospheric pressure chemical ionization of morphine, codeine, and thebaine in corona discharge -ion mobility spectrometry: Protonation, ammonium attachment, and carbocation formation. J. Mass Spectrom. 2020; 55: 4586. [DOI:10.1002/jms.4586]
13. Agnihotri A, Tewari S. C, Khatod P, Banerjee S and Balasubramanian M. Determination of thebaine in crude thebaine samples by infrared and ultraviolet spectrophotometric methods. Analyst. 1984; 109: 1413-1416. [DOI:10.1039/an9840901413]
14. Williams RD and Ellis B. E. Age and tissue distribution of alkaloids in Papaver somniferum. Phytochem. 1989; 28: 2085-2088. [DOI:10.1016/S0031-9422(00)97924-X]
15. Bar C. Coffman C and Gentner W. Growth, Development, and thebaine Content of Papaver bracteatum Lindl. in Relation to Spacing1. J. Agron. 1987; 79: 935-937. [DOI:10.2134/agronj1987.00021962007900050036x]
16. Fang H, Zeng Z, Liu L and Pang D. On-line back-extraction field-amplified sample injection method for directly analyzing cocaine and thebaine in the extractants by solvent microextraction. Anal. Chem.. 2006; 78: 1257-1263. [DOI:10.1021/ac0516537]
17. Yoshimatsu K. Kiuchi F. Shimomura K and Makino Y. A rapid and reliable solid-phase extraction method for high-performance liquid chromatographic analysis of opium alkaloids from Papaver plants. Chem. Pharm. Bull. 2005; 53: 1446-1450. [DOI:10.1248/cpb.53.1446]
18. Janicot J, Caude M, Rosset R and Veuthey J. Extraction of major alkaloids from poppy straw with near-critical mixtures of carbon dioxide and polar modifiers. J. Chromatogr. A. 1990; 505: 247-256. [DOI:10.1016/S0021-9673(01)93083-3]
19. Seidi S, Yamini Y, Heydari A, Moradi M, Esrafili A and Rezazadeh M. Determination of thebaine in water samples, biological fluids, poppy capsule, and narcotic drugs, using electromembrane extraction followed by high-performance liquid chromatography analysis. Anal. Chim. Acta.. 2011; 701: 181-188. [DOI:10.1016/j.aca.2011.05.042]
20. Fakhari A. R. Nojavan S. Ebrahimi S. N and Evenhuis C. J. Optimized ultrasound‐assisted extraction procedure for the analysis of opium alkaloids in papaver plants by cyclodextrin‐modified capillary electrophoresis. J. Sep. Sci. 2010; 33: 2153-2159. [DOI:10.1002/jssc.201000135]
21. Yazdani D, Rezazadeh Sh and Shahnazi S. Review of poppy (Papaver somniferum L.). J. M. Plants 2003; 2: 1-12.
22. Hofman P and Menary R. Alkaloid losses from the capsules of Papaver somniferum L. during kiln drying and storage under commercial conditions in Tasmania. J. Stored Prod. Res.. 1985; 21: 135-139. [DOI:10.1016/0022-474X(85)90007-4]
23. Rezaei M. Naghavi M. R. Hoseinzade A. H and Abbasi A. Developmental accumulation of thebaine and some gene transcripts in different organs of Papaver bracteatum. Ind. Crops Prod. 2016; 80: 262-268. [DOI:10.1016/j.indcrop.2015.11.009]
24. Qaderi A. Omidi M. Pour-Aboughadareh A. Poczai P. Shaghaghi J. Mehrafarin A and Etminan A. Molecular diversity and phytochemical variability in the Iranian poppy (Papaver bracteatum Lindl.): A baseline for conservation and utilization in future breeding programmers. Ind Crops Prod. 2019; 130: 237-247. [DOI:10.1016/j.indcrop.2018.12.079]
25. Lalezari I. Nasseri P and Asgharian R. Papaver bracteatum lindl: Population arya II. J. Pharm. Sci. 1974; 63: 1331. [DOI:10.1002/jps.2600630844]
26. Rezaei M, Naghavi MR, Hosseinzadeh AH and Abbasi A. Measurement of some benzylisoquinoline alkaloids in different organs of Persian poppy during onto genetical stages. Chem. Biodivers. 2006; 135: 539-543. [DOI:10.1002/cbdv.201500172]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
