سال 18، شماره 72 - ( 8-1398 )                   سال 18 شماره 72 صفحات 160-169 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Ashrafi Parchin R, Nasrollah Nezhad Ghomi A, Naghdi Badi H, Eskandari A, Navabpour S, Mehrafarin A. Effect of Gamma Irradiation on Growth and Trigonelline Content in Hairy Root of Iranian Fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.). J. Med. Plants. 2019; 18 (72) :160-169
URL: http://jmp.ir/article-1-2712-fa.html
اشرفی پارچین رضا، نصراله‌نژاد‌قمی علی‌اصغر، نقدی‌بادی حسنعلی، اسکندری علی، نواب‌پور سعید، مهرآفرین علی. اثر پرتودهی گاما بر رشد و میزان تریگونلین ریشه‌های مویین شنبلیله ایرانی (Trigonella foenum-graecum L.). فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 18 (72) :160-169

URL: http://jmp.ir/article-1-2712-fa.html


1- دانشجوی دکترا، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
2- استادیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
3- مرکز تحقیقات گیاهان دارویی، پژوهشکده گیاهان دارویی جهاد دانشگاهی، کرج، ایران
4- پژوهشکده تحقیقات کشاورزی، پزشکی و صنعتی، پژوهشگاه علوم و فنون هسته‌ای، کرج، ایران
5- دانشیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
چکیده:   (846 مشاهده)
مقدمه: شنبلیله گیاه دارویی ارزشمندی است و بررسی اثرجهش‌های القایی در راستای افزایش ماده مؤثره آن ضروری می‌باشد.
هدف: در این تحقیق، تغییرات فیتوشیمیایی و رشدی ریشه‌های مویین و نرمال گیاه شنلیله در پاسخ به پرتودهی گاما مورد ارزیابی قرار گرفته است.
روش بررسی: در این تحقیق پرتوتابی گاما بر روی بذور شنبلیله ایرانی در پنج دز (شامل 0، 100، 200، 300 و 400 گری) اعمال شد و سپس اثرات پرتودهی بذور در شرایط کشت ریشه مویین در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار مورد ارزیابی قرار گرفت. به منظور القای ریشه‌های مویین در شنبلیله از سویه ATCC15834 باکتری اگروباکتریوم رایزوژنز استفاده شد.
نتایج: نتایج نشان داد که دزهای مختلف پرتوتابی برهمه صفات مورد بررسی در ریشه‌های نرمال و مویین تأثیر معنی‌داری داشتند. مقایسه میانگین داده‌ها نشان داد که در همه صفات مورد مطالعه، بیشترین مقادیر صفات مربوط به دز 100 گری و کمترین مقادیر صفات مربوط به پرتوتابی بذور با دز 400 گری است. محتوای تریگونلین در ریشه‌های مویین در مقایسه با ریشه‌های نرمال به طور قابل توجهی بیشتر بود به طوری که میزان تریگونلین در ریشه‌های مویین تیمارهای مختلف شامل (0)، 100، 200، 300 و 400 گری به ترتیب به میزان 46/2، 67/2، 66/2، 44/2 و 64/2 برابر بیشتر از ریشه‌های نرمال بود.
نتیجه‌گیری: نتایج این تحقیق بیانگر افزایش تکثیر سلولی، رشد و مقدار متابولیت‌های ثانویه تریگونلین به دلیل اثر تحریک‌کنندگی دزهای پایین پرتوهای گاما است.
متن کامل [PDF 790 kb]   (221 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشی | موضوع مقاله: بيوتكنولوژی
دریافت: 1397/8/26 | پذیرش: 1397/10/29 | انتشار: 1398/8/6
* نشانی نویسنده مسئول: استادیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران

فهرست منابع
1. Thomas JE, Bandara M, Lee EL, Driedger D and Acharya S. Biochemical monitoring in fenugreek to develop functional food and medicinal plant variants. New Biotechnol. 2011; 28: 110 - 7. [DOI:10.1016/j.nbt.2010.09.001]
2. Raju J, Patlolla JM, Swamy MV and Rao CV. Diosgenin, a steroid saponin of Trigonella foenum graecum (Fenugreek), inhibits azoxymethane-induced aberrant crypt foci formation in F344 rats and induces apoptosis in HT-29 human colon cancer cells. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2004; 8: 1392 - 8.
3. Aswar U, Bodhankar SL, Mohan V and Thakurdesai PA. Effect of furostanol glycosides from Trigonella foenum-graecum on the reproductive system of male albino rats. Phytother. Res. 2010; 24: 1482 - 8. [DOI:10.1002/ptr.3129]
4. Mahmoud NY, Salem RH and Mater AA. Nutritional and biological assessment of wheat biscuits supplemented by fenugreek plant to improve diet of anemic rats. J. Acad. Nutr. Diet. 2012; 1: 1 - 9.
5. Piao CH, Bui TT, Song CH, Shin HS, Shon DH and Chai OH. Trigonella foenum-graecum alleviates airway inflammation of allergic asthma in ovalbumin-induced mouse model. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2017; 482: 1284 - 8. [DOI:10.1016/j.bbrc.2016.12.029]
6. Jiang W, Gao L, Li P, Kan H, Qu J, Men L, Liu Z and Liu Z. Metabonomics study of the therapeutic mechanism of fenugreekgalactomannan on diabetic hyperglycemia in rats, byultra-performance liquid chromatography coupled with quadrupoletime-of-flight mass spectrometry. J. Chromatogr. B. 2017; 1044 - 5: 8 - 16. [DOI:10.1016/j.jchromb.2016.12.039]
7. Al-Habori M and Raman A. Pharmacological properties. In: Petropoulos G (ed) Fenugreek-the genus Trigonella. Taylor & Francis, London. 2002, pp: 162-82.
8. Aasim M, Khawar KM, Yalcin G and Bakhsh A. Current trends ın fenugreek bıotechnology and approaches towards its improvement. AJSIH. 2014; 4: 127-36.
9. Shahabzadeh Z, Bahram H and Faramarzi Hafez R. Induction of Transgenic Hairy Roots in Trigonella foenumgraceum Co-cultivated with Agrobacterium rhizogenes harboring a GFP Gene. J. Crop Sci. Biotechnol. 2013; 16 (4): 263 - 8. [DOI:10.1007/s12892-013-0082-x]
10. Cao D, Hou W, Song S, Sun H, Cao Y and Han T. Assessment of conditions affecting Agrobacterium rhizogenesmediated transformation of soybean. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2009; 96: 45 - 52. [DOI:10.1007/s11240-008-9458-x]
11. Giri A, Ravindra ST, Dhingra V and Narasu L. Influence of different strains of Agrobacterium rhizogenes on induction of hairy roots and artemisinin production in Artemisia annua. Current Sci. 2001; 81: 378 -82.
12. Veena V and Taylor GG. Agrobacterium rhizogenes: recent developments and promising applications. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 2007; 433: 384 - 403. [DOI:10.1007/s11627-007-9096-8]
13. Yang C, Chen M, Zeng L, Zhang L, Liu X, Lan X, Tang K and Liao Z. Improvement of tropane alkaloids production in hairy root cultures of Atropa belladonna by over expressing pmt and h6h genes. Plant Omics J. 2011; 4: 29 - 33. [DOI:10.1111/j.1399-3054.2011.01506.x]
14. Vrishali VK, Snehal SD and Neha A. Gurave Hairy Root Culture: A Promising Approach in Biotransformation. Asian J. Plant Sci. Res. 2016; 6 (4): 6 - 11.
15. Eapen S and Mitra R. Plant Hairy Root Cultures: Prospects and Limitations. Indian Natl. Sci. Acad. 2001; 3 (4): 107-20.
16. Lee HB, Kim Y, Jin HZ, Lee JJ, Kim CJ, Park JY and Jung HS. A new Hypocrea strain producing harzianum A cytotoxic to tumour cell lines. Lett. Appl. Microbiol. 2005; 40: 497-503. [DOI:10.1111/j.1472-765X.2005.01719.x]
17. Hu ZhD and Du M. Hairy root and its application in plant genetic engineering. J. Integr. Plant Biol. 2006; 48 (2): 121−7. [DOI:10.1111/j.1744-7909.2006.00121.x]
18. Datta P, Dasgupta A, Kumar Singh A, Mukherjee P, Kundu M and Basu J. Interaction between FtsW and penicillin‐binding protein 3 (PBP3) directs PBP3 to mid‐cell, controls cell septation and mediates the formation of a trimeric complex involving FtsZ, FtsW and PBP3 in mycobacteria. Mol. Microbiol. 2006; 62 (6), 1655-73. [DOI:10.1111/j.1365-2958.2006.05491.x]
19. Agrawal RS, Shirale DO, Syed HM and Syed AAR. Physico-chemical properties of fenugreek (Trigonella foenum - graceum L.) seeds. IJLTEMAS. 2015; 1 - 3.
20. Yaqoob M and Rashid A. Induced mutation studies in some mungbean (Vigna radiata L.) Wilczek cultivars. J. Biol. Sci. 2001; 1: 805 - 8. [DOI:10.3923/jbs.2001.805.808]
21. Sharma RP and Chopra VL. Plant Breeding-Theory and Practice. Oxford and IBH Publishing Co. Pvt. Ltd., New Delhi. 2000, pp: 321-42.
22. Ghasemi Bezdi K and Ahmadi A. Cell and tissue culture biotechnology (in micropropagation and plant breeding. Makhtomgoli Faraghi. 2010; pp: 254.
23. Bayro MJ, Debelouchina GT, Eddy MT, Birkett NR, MacPhee CE, Rosay M, Maas WE, Dobson CM and Griffin RG. Intermolecular structure determination of amyloid fibrils with magic-angle spinning and dynamic nuclear polarization NMR. J. Am. Chem. Soc. 2011, 133 (35): 13967 - 74. [DOI:10.1021/ja203756x]
24. Jain SM. Mutagenesis in crop improvement under the climate change. Rom. Biotechnol. Lett. 2010; 15 (2): 88-106.
25. Jain SC and Agrawal M. Effect of mutagens on steroidal sapogenin in Trigonella foenumgraecum tissue cultures. Fitoterapia 1994; 65 (4): 367 - 75.
26. Topuz A and Ozdemir F. Influences of gamma irradiation and storage on the capsaicinoids of sun-dried and dehydrated paprika. Food Chem. 2004; 86: 509 - 15. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.09.003]
27. Kim DS, Song M, Kim SH, Jang DS, Kim JB, Ha BK, Kim SH, Lee KJ, Kang SY, Jeong IY. The improvement of ginsenoside accumulation on Panax ginseng as a result of g-irradiation. J. Ginseng Res. 2013; 37 (3): 332 - 40. [DOI:10.5142/jgr.2013.37.332]
28. Doyle JJ and Doyle JL. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus. 1990; 12: 13 - 5.
29. Stennert A and Gerhard Maier H. Trigonelline in coffee. Z Lebensm Unters Forsch. 1994; 199: 198-200. [DOI:10.1007/BF01193443]
30. Khater MA, El-Awadi ME, Elashtokhy MMA, Abdel-Baky YR and Shalaby MAF. Physiological and molecular changes in fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) as a response to gamma rays. Int. J. Pharmtech Res. 2016; 9 (12): 306 - 16.
31. Hanafy RS and Akladious SA. Physiological and molecular studies on the effect of gamma radiation in fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) plants. J. Genet. Biotechnol. 2018; 1-10.
32. Charbaji T and Nabulsi I. Effect of Low Doses of Gamma Irradiation on in Vitro Growth of Grapevine. PCTOC. 1999; 57: 129 - 32. [DOI:10.1023/A:1006360513965]
33. Chung HJ, Kim MJ, Lim JY, Park SM, Cha BJ, Kim YH, Yang MS and Kim DH. A gene encoding phosphatidyl inositol-specific phospholipase C from Cryphonectria parasitica modulates the lac1 expression. Fungal Genet. Biol. 2006; 43 (5): 326 - 36. [DOI:10.1016/j.fgb.2005.12.009]
34. Fulzele DP, Satdive RK, Kamble S, Singh S and Singh S. Improvement of anticancer drug camptothecin production by gamma irradiation on callus Cultures of Nothapodytes foetida. IJPRAS. 2015; 4 (1): 19 - 27.
35. Sharp JM and Doran PM. Strategies for enhancing monoclonal antibody accumulation in plant cell and organ cultures. Biotechnol Prog. 2001; 17: 979 - 92. [DOI:10.1021/bp010104t]
36. Jan S, Parween T, Siddiqi TO and Mahmooduzzafar. Effect of gamma radiation on morphological, biochemical, and physiological aspects of plants and plant products. Environ. Rev. 2012; 20: 17 - 39. [DOI:10.1139/a11-021]
37. Ahmed FA, Ghanem SA, Reda AA and Solaiman M. Effect of some growth regulators and subcultures on callus proliferation and trigonelline content of fenugreek (Trigonella foenum-graecum). Bulletin of the National Research Centre. 2000; 25: 35 - 46.
38. El-Beltagi HS, Ahmed OK and El-Desouky W. Effect of low doses g-irradiation on oxidative stress and secondary metabolites production of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) callus culture. Radiat. Phys. Chem. 2011; 80 (9): 968 - 76. [DOI:10.1016/j.radphyschem.2011.05.002]
39. Zhang JY, Bae TW, Boo KH, Sun HJ, Song IJ, Pham CH, Ganesan M, Yang DH, Kang HK, Riu KZ, Lim PO and Lee HY. Ginsenoside production and morphological characterization of wild ginseng (Panax ginseng Meyer) mutant lines induced by g-irradiation (60 co) of adventitious roots. J. Ginseng Res. 2011; 35 (3): 283 - 93 [DOI:10.5142/jgr.2011.35.3.283]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به فصلنامه علمی پژوهشی گیاهان دارویی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Journal of Medicinal Plants

Designed & Developed by : Yektaweb