دوره 4، شماره 72 و S12 - ( ويژه‌نامه ۱2- ضميمه پاييز 1398 )                   جلد 4 شماره 72 و S12 صفحات 103-109 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Esmaeili S, Irani M, Moazzeni H, Mosaddegh M. Inhibition of Heme Polymerization, the Mechanism of Antimalarial Activity in Phlomis caucasica Rech.f. (Lamiaceae). J. Med. Plants. 2020; 4 (72) :103-109
URL: http://jmp.ir/article-1-2278-fa.html
اسماعیلی سمیه، ایرانی محبوبه، موذنی حمید، مصدق محمود. مهار پلیمریزاسیون ماده هِم (Heme)، مکانیسم اثر ضد مالاریایی اختصاصی P‌hlomis caucasica Rech.f.. فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 4 (72) :103-109

URL: http://jmp.ir/article-1-2278-fa.html


1- گروه داروسازی سنتی، دانشکده طب سنتی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات طب سنتی و مفردات پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران ، m.irani@sbmu.ac.ir
3- گروه گیاهشناسی، پژوهشکده علوم گیاهی، دانشگاه فردوسی مشهد، ایران
4- گروه فارماکوگنوزی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران
چکیده:   (400 مشاهده)
مقدمه: مالاریا یکی از مهم‌ترین بیماری‌های انگلی در انسان است که روزانه منجر به مرگ 1200 نفر می‌شود. این بیماری توسط پلاسمودیوم ایجاد می‌شود. انگل پلاسمودیوم، هموگلوبین موجود در گلبول قرمز را به هِم (Heme) آزاد و اسیدهای آمینه، هیدرولیز می‌کند. این انگل برای سمیت‌زدایی هِم آزاد تولید شده، مجهز به سیستم اختصاصی دفع سمیت هِم می‌باشد که مهم‌ترین مکانیسم، پلیمریزه شدن هِم می‌باشد. لذا پی بردن به ترکیبات مهارکننده‌ی پلیمریزاسیون هِم، دارای اهمیت بسزایی در کشف ترکیبات ضد مالاریا میباشد.
هدف: بررسی مکانیسم مهار پلیمریزاسیون هِم برخی از گیاهان خانواده نعناییان با پتانسیل اثر ضدمالاریایی هدف کلی این تحقیق می‌باشد.
روش بررسی: در این مطالعه، هفت گیاه از خانواده نعناییان با متانول بوسیله روش ماسراسیون عصاره‌گیری شدند. برای بررسی فعالیت مهار پلیمریزاسیون هِم عصاره‌های گیاهی از روش ITHD (Inhibition Test of Heme Detoxification) استفاده شد. هِمین کلراید: تویین 20 و نمونه‌ها با نسبت 9:9:2 در پلیت 96 چاهکی مخلوط و به مدت 24 ساعت در دمای ºC60 انکوبه شدند. جذب محلول‌ها با دستگاه الایزاریدر در طول موج  nm405  بررسی و درصد مهار پلیمریزاسیون هِم آنها محاسبه شد. از کلروکین دی فسفات به عنوان کنترل مثبت استفاده شد. گیاهان مؤثر با روش ماسراسیون توسط حلال‌های اتردوپترول، کلروفرم، متانول، متانول 70: آب 30 (هیدروالکلی 70%) و آب فرکشنه و اثر مهار هم‌زدایی آنها نیز مورد بررسی قرار گرفت.
نتایج: عصاره متانولی Marrubium astracanicum Jacq. وPhlomis caucasica Rech.f.  قادر به مهار پلیمریزاسیون هِم به ترتیب 40 و 35% می‌باشند. بررسی فرکشن‌ها نشان داد فرکشن آبی P. caucasica به طور کامل (100%) پلیمریزاسیون هِم را مهار می‌کند.
نتیجه‌گیری: فرکشن آبی گیاه گوش بره قفقازی (P. caucasica) با مکانیسم اختصاصی مهار هم‌زدایی، برای رسیدن به ترکیبات مهارکننده‌ی پلیمریزاسیون ماده هم در روند کشف داروی ضدمالاریا معرفی می‌شود.
متن کامل [PDF 285 kb]   (74 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشی | موضوع مقاله: داروسازی سنتی و طب سنتی
دریافت: ۱۳۹۷/۶/۲۷ | پذیرش: ۱۳۹۷/۹/۱۲ | انتشار: ۱۳۹۸/۱۲/۱۷

فهرست منابع
1. Macdonald G. Harrison's Internal Medicine, 17th edition. ‐ by A. S. Fauci, D. L. Kasper, D. L. Longo, E. Braunwald, S. L. Hauser, J. L. Jameson and J. Loscalzo. Internal Medicine Journal. 2008; 38 (12): 932-932. [DOI:10.1111/j.1445-5994.2008.01837.x]
2. WHO. Fact Sheet: World Malaria Report. World Health Organization; 2017 [cited 2018 Jun 13]. Available from: http://www.who.int/malaria/media/world-malaria-report-2016/en/
3. Norouzinejad F, Ghaffari F, Raeisi A and norouzinejad A. Epidemiological status of malaria in Iran, 2011-2014. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine 2016; 9 (11): 1055-1061. [DOI:10.1016/j.apjtm.2016.09.007]
4. Kassa M, Sileshi M, Mohammed H, Taye G and Asfaw M. Development of resistance by Plasmodium falciparum to sulfadoxine/ pyrimethamine in Amhara Region, Northwestern Ethiopia. Ethiop. Med. J. 2005; 43 (3): 181-187.
5. Edrissian G, Afshar A, Kanani A, Satvatand M and Ghorbani M. Resistance of Plasmodium falciparum to chloroquine in south eastern Iran. Medical J. the Islamic Republic of Iran. 1987; 1 (1): 46-49. [DOI:10.1016/0035-9203(87)90317-8]
6. Edrissian GH, Shahabi S, Pishva E, Hajseyed-Javadi J, Khaleghian B, Ghorbani M, Emadi A M, Afshar A and Saghari H. Imported cases of chloroquine-resistant falciparum malaria in Iran. Bull Soc Pathol Exot Filiales 1986; 79 (2): 217-221.
7. Nateghpour MM, Edrissian Gh, Torabi A, Raesi A, Motevalli-Haghi H, Abed-Khojasteh N and Ghobakhlo N. Monitoring of Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum response to chloroquine in Bandar-Abbas district, Hormozgan province, Iran. Tehran University Medical J. 2009; 67 (3): 178-183.
8. Sherman IW. Malaria: Parasite Biology, Pathogenesis, and Protection. 1998, ASM Press.
9. Ryter SW and Tyrrell R M. The heme synthesis and degradation pathways: role in oxidant sensitivity. Heme oxygenase has both pro- and antioxidant properties. Free Radic. Biol. Med. 2000; 28 (2): 289-309. [DOI:10.1016/S0891-5849(99)00223-3]
10. Kumar S and Bandyopadhyay U. Free heme toxicity and its detoxification systems in human. Toxicology Letters 2005; 157 (3): 175-188. [DOI:10.1016/j.toxlet.2005.03.004]
11. Sullivan DJ, Gluzman IY and Goldberg DE. Plasmodium hemozoin formation mediated by histidine-rich proteins. Science 1996; 271 (5246): 219-222. [DOI:10.1126/science.271.5246.219]
12. Francis SE, Sullivan DJ, and Goldberg DE. Hemoglobin metabolism in the malaria parasite Plasmodium falciparum. Annu. Rev. Microbiol. 1997; 51: 97-123. [DOI:10.1146/annurev.micro.51.1.97]
13. Kumar S, Guha M, Choubey V, Maity P and Bandyopadhyay U. Antimalarial drugs inhibiting hemozoin (β-hematin) formation: A mechanistic update. Life Sciences 2007; 80 (9): 813-828. [DOI:10.1016/j.lfs.2006.11.008]
14. Hajimehdipoor H, Esmaeili S, Shekarchi M, Emrarian T and Naghibi F. Investigation of some biologic activities of Swertia longifolia Boiss. Res. Pharm. Sci. 2013; 8 (4): 253-259.
15. Mosaddegh M, Irani M and Esmaeili S. Inhibition test of heme detoxification (ITHD) as an approach for detecting antimalarial agents in medicinal plants. Research J. Pharmacognosy 2018; 5 (1): 5-11.
16. Mosaddegh M, Esmaeili S, Naghibi F, Hamzeloo Moghadam M, Haeri A, Pirani A and Moazzeni H. Ethnomedical Survey and Cytotoxic Activity of Medicinal Plant Extracts Used in Kohgiluyeh and Boyerahmad Province in Iran. J. Herbs, Spices & Medicinal Plants 2012; 18 (3): 211-221. [DOI:10.1080/10496475.2012.671801]
17. Kirmizibekmez H, Atay I, Kaiser M, Yesilada E and Tasdemir D. In vitro antiprotozoal activity of extracts of five Turkish Lamiaceae species. Nat Prod. Commun. 2011; 6 (11): 1697-1700. [DOI:10.1177/1934578X1100601132]
18. Leporatti M and Ghedira K. Comparative analysis of medicinal plants used in traditional medicine in Italy and Tunisia. J. Ethnobiology and Ethnomedicine. 2009; 5 (1): 31. [DOI:10.1186/1746-4269-5-31]
19. Esmaeili S, Naghibi F, Mosaddegh M, Sahranavard S, Ghafari S and Abdullah N R. Screening of antiplasmodial properties among some traditionally used Iranian plants. J. Ethnopharmacol. 2009; 121 (3): 400-404. [DOI:10.1016/j.jep.2008.10.041]
20. Sathiyamoorthy P, Lugasi-Evgi H, Schlesinger P, Kedar I, Gopas J, Pollack Y and Golan-Goldhirsh A. Screening for Cytotoxic and Antimalarial Activities in Desert Plants of the Negev and Bedouin Market Plant Products. Pharmaceutical Biol. 2008; 37 (3): 188-195. [DOI:10.1076/phbi.37.3.188.6298]
21. Tasdemir D, Brun R, Perozzo R and Donmez A. Evaluation of antiprotozoal and plasmodial enoyl-ACP reductase inhibition potential of turkish medicinal plants. Phytother. Res. 2005; 19 (2): 162-166. [DOI:10.1002/ptr.1648]
22. Tripathi A K, Khan S I, Walker L A and Tekwani B L. Spectrophotometric determination of de novo hemozoin/β-hematin formation in an in vitro assay. Analytical Biochem. 2004; 325 (1): 85-91. [DOI:10.1016/j.ab.2003.10.016]
23. Ozbilgin A, Durmuskahya C, Kayalar H and Ostan I. Assessment of in vivo antimalarial activities of some selected medicinal plants from Turkey. Parasitol. Res. 2014; 113 (1): 165-173. [DOI:10.1007/s00436-013-3639-1]
24. Vargas S, Ndjoko Ioset K, Hay A E, Ioset J R, Wittlin S and Hostettmann K. Screening medicinal plants for the detection of novel antimalarial products applying the inhibition of β-hematin formation. J. Pharmaceutical and Biomedical Analysis 2011; 56 (5): 880-886. [DOI:10.1016/j.jpba.2011.06.026]
25. Dua V K, Verma G, Agarwal D D, Kaiser M and Brun R. Antiprotozoal activities of traditional medicinal plants from the Garhwal region of North West Himalaya, India. J. Ethnopharmacol. 2011; 136 (1): 123-128. [DOI:10.1016/j.jep.2011.04.024]
26. Ebrahimi S N, Zimmermann S, Zaugg J, Smiesko M, Brun R and Hamburger M. Abietane diterpenoids from Salvia sahendica--antiprotozoal activity and determination of their absolute configurations. Planta Med. 2013; 79 (2): 150-156. [DOI:10.1055/s-0032-1328063]
27. Madani Mousavi S N, Delazar A, Nazemiyeh H and Khodaie L. Biological Activity and Phytochemical Study of Scutellaria platystegia. Iran. J. Pharm. Res. 2015; 14 (1): 215-223.
28. Kirmizibekmez H, Calis I, Perozzo R, Brun R, Donmez AA, Linden A, et al. Inhibiting activities of the secondary metabolites of Phlomis brunneogaleata against parasitic protozoa and plasmodial enoyl-ACP Reductase, a crucial enzyme in fatty acid biosynthesis. Planta Med. 2004;70 (8): 711-717. [DOI:10.1055/s-2004-827200]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به فصلنامه علمی پژوهشی گیاهان دارویی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Journal of Medicinal Plants

Designed & Developed by : Yektaweb