سال 22، شماره 88 - ( 12-1402 )                   سال 22 شماره 88 صفحات 9-1 | برگشت به فهرست نسخه ها

Ethics code: 010221/2012-3

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Miranda M A, Sares C, Andrade A F, Borges K S, McChesney J D, Bastos J K et al . Effects of ethanolic extract and cernumidine compound obtained from Solanum cernuum’s Vell. leaves on benign prostatic hyperplasia. J. Med. Plants 2024; 22 (88) :1-9
URL: http://jmp.ir/article-1-3587-fa.html
میراندا ماریزا آبرو، سارس کلودیا، آندراد آگوستو فاریا، بورجس کلیتون سیلوا، مک‌چسنی جیمز دیویی، باستوس ژایرو کناپ و همکاران.. اثرات عصاره اتانولی و ترکیب سرنومیدین بدست آمده از Solanum cernuum’s Vell. بر روی هیپرپلازی خوش‎خیم پروستات. فصلنامه گياهان دارویی. 1402; 22 (88) :1-9

URL: http://jmp.ir/article-1-3587-fa.html


1- دانشکده علوم دارویی ریبیرائو پرتو، دانشگاه سائوپائولو، سائوپائولو، برزیل ، marizamiranda@ufl.edu
2- گروه جراحی و آناتومی، دانشکده پزشکی ریبیرائو پرتو، دانشگاه سائوپائولو، سائوپائولو، برزیل
3- گروه اطفال، دانشکده پزشکی ریبیرائو پرتو، دانشگاه سائوپائولو، سائو پائولو، برزیل
4- موسسه تجاری جداسازی ترکیبات طبیعی، آکسفورد، ایالات متحده آمریکا
5- دانشکده علوم دارویی ریبیرائو پرتو، دانشگاه سائوپائولو، سائوپائولو، برزیل
چکیده:   (181 مشاهده)
مقدمه: گیاه (Solanaceae. (Vell Solanum cernuum، بومی برزیل بوده و به طور سنتی برای درمان زخم، آسیب کبدی، عفونت‌های پوستی، سوزاک و هیپرپلازی خوش خیم پروستات (BPH) استفاده می‌شود. هدف: بررسی تأثیر عصاره هیدروالکلی و ترکیب سرنومیدین به‌دست‌آمده از برگ گیاه Vell cernuum. S. در برابر کشت سلولی عضله صاف اولیه پروستات و ارزیابی اثر بالقوه آنها به روش فلوسیتومتری. روش بررسی: عصاره هیدرواتانولی cernuum. S از برگ‌های خشک و پودر شده گیاه و به روش خیساندن حاصل گردید. این عصاره حاوی 4/8 درصد وزنی-وزنی آلکالوئید سرنومیدین که به روش کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا مشخص گردید، بود. کشت سلولی عضله صاف اولیه سرطان خوشخیم پروستات در سنجش تکثیر سلولی و آپوپتوز مورد استفاده قرار گرفت. سلول‌های عضله صاف سرطان پروستات خوشخیم به مدت 48 ،72 و 96 ساعت در معرض 0/5 - 0/125 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر عصاره هیدرواتانولی و 0/1 - 0/025 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر سرنومیدین قرار گرفتند. نتایج: عصاره هیدرواتانولی (2 میلی‌گرم در میلی‌لیتر) و سرنومیدین (1 میلی‌گرم در میلی‌لیتر [M6-10 × 3/3]) به ترتیب 60 و 62 درصد رشد سلولی را در 96 ساعت مهار کردند و درنهایت منجر به مرگ سلولی با آپوپتوز شدند. از سوی دیگر، تنها سرنومیدین (1 میلی‌گرم در میلی‌لیتر) باعث مرگ قابل توجهی در اثر نکروز نسبت به شاهد شد. نتیجه‌گیری: یافته‌های به‌دست‌آمده استفاده از cernuum. S در طب بومی را تأیید می‌کند و نشان می‌دهد که سرنومیدین یک ترکیب مناسب برای مطالعات بیشتر با تمرکز بر درمان سرطان خوشخیم پروستات می‌باشد.
متن کامل [PDF 705 kb]   (125 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشی | موضوع مقاله: فارماكوگنوزی و فارماسيوتيكس
دریافت: 1402/9/15 | پذیرش: 1403/1/25 | انتشار: 1402/12/13

فهرست منابع
1. Lim K.B. Epidemiology of clinical benign prostatic hyperplasia. Asian J. Urol. 2017; 4(3): 148-151. [DOI:10.1016/j.ajur.2017.06.004]
2. Egan K.B. The Epidemiology of Benign Prostatic Hyperplasia Associated with Lower Urinary Tract Symptoms: Prevalence and Incident Rates. Urol. Clin. North Am. 2016; 43(3): 289-297. [DOI:10.1016/j.ucl.2016.04.001]
3. Bearelly P, Avellino G.J. The role of benign prostatic hyperplasia treatments in ejaculatory dysfunction. Fertil. Steril. 2021; 116(3): 611-617. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2021.07.1199]
4. GBD 2019 Benign Prostatic Hyperplasia Collaborators. The global, regional, and national burden of benign prostatic hyperplasia in 204 countries and territories from 2000 to 2019: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2019. Lancet Healthy Longev. 2022; 3: e754-76.
5. Tamalunas A, Keller P, Schott M, Atzler M, Ebner B, Hennenberg M, Stief C G and Magistro G. Benign prostate Hyperplasia current medical therapy, new developments, and side effects. Ther. Umsch. 2023; 80(3): 113-122. [DOI:10.1024/0040-5930/a001423]
6. Brandão MGL, Pignal M, Romaniuc S, Grael CFF and Fagg CW. Useful Brazilian plants listed in the field books of the French naturalist Auguste de Saint-Hilaire (1779-1853). J. Ethnopharmacol. 2012; 143(2): 488-500. [DOI:10.1016/j.jep.2012.06.052]
7. Lopes LC, Roman B, Medeiros MA, Mukhopadhyay A, Utrilla P, Gálvez J, Mauriño SG, Moltiva V, Lourenço A and Feliciano AS. Cernumidine and isocernumidine, new type of cyclic guanidine alkaloids from Solanum cernuum. Tetrahedron Lett. 2011; 52(48): 6392-6395. [DOI:10.1016/j.tetlet.2011.09.060]
8. Lopes LC, De Carvalho JE, Kakimore M, Vendramini-Costa DB, Medeiros MA, Spindola HM, Ávila-Román J, Lourenço AM and Motilva V. Pharmacological characterization of Solanum cernuum Vell.: 31-Norcycloartanones with analgesic and anti-inflammatory properties. Inflammopharmacol. 2014; 22: 179-185. [DOI:10.1007/s10787-013-0182-8]
9. Grando R, Antônio M A, Araújo C E P, Soares C, Medeiros M A, Carvalho J E de Lourenço A M, and Lopes L C. Antineoplastic 31-Norcycloartanones from Solanum cernuum Vell. Z. Naturforsch C. 2008; 63: 507-514. [DOI:10.1515/znc-2008-7-807]
10. Ramos AC and de Oliveira RR. A new alkaloid and flavonoids isolated from Solanum cernuum leaves by high-performance countercurrent chromatography. Nat. Prod. Res. 2017; 31(20): 2405-2412. [DOI:10.1080/14786419.2017.1311889]
11. Ramos A C and De Oliveira R R. One-step separation of terpenoids from leaves extracts of Solanum cernuum by high-performance countercurrent chromatography. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2016; 39(1): 8-12. [DOI:10.1080/10826076.2015.1115767]
12. Miranda MA, Mondal A, Sachdeva M, Cabral H, Neto YAAH, Khan I, Groppo M, McChesney JD and Bastos JK. Chemosensitizing Effect of Cernumidine extracted from Solanum cernuum on bladder cancer cells in vitro. Chem. Biodivers. 2019; 16(10): 16-24. [DOI:10.1002/cbdv.201900334]
13. Wang S, Lee DY, Shang Y, Liao J, Cao X, Xie L, Zhang T, Liu J and Dai R. The bioactive alkaloids identified from Cortex Phellodendri ameliorate benign prostatic hyperplasia viaLOX-5/COX-2 pathways. Phytomedicine 2021; 93: 15-25. 153813. [DOI:10.1016/j.phymed.2021.153813]
14. Miao L, Yun X, Yang X, Jia S, Jiao C, Shao R, Hao J, Chang Y, Fan G, Zang J, Geng Q, Wichai N and Gao X. An inhibitory effect of Berberine from herbal Coptis chinensis Franch on rat detrusor contraction in benign prostatic hyperplasia associated with lower urinary tract symptoms. J. Ethnopharmacol. 2021; 268: 113-126. [DOI:10.1016/j.jep.2020.113666]
15. Li T, Xu K, He J, Jahan N, Song J and Wang S. Effects of isocorynoxeine, from Uncaria, on lower urinary tract dysfunction caused by benign prostatic hyperplasia via antagonism of α1A-adrenoceptors. Toxicol. Appl. Pharmacol. 2019; 376: 95-106. [DOI:10.1016/j.taap.2019.05.018]
16. Zhao Y, Zhang Y, Li Y, Yang M, Yuan J, Cao Y, Xu L, Ma X, Lin S, An J and Wang S Yohimbine hydrochloride inhibits benign prostatic hyperplasia by downregulating steroid 5α-reductase type 2. Eur. J. Pharmacol. 2021; 908: 175-183. [DOI:10.1016/j.ejphar.2021.174334]
17. Miranda MA, Lemos M, Cowart KA, Rodenburg D, Mcchesney JD, Radwan MM, Furtado NAJC and Bastos JK. Gastroprotective activity of the hydroethanolic extract and isolated compounds from the leaves of Solanum cernuum Vell. J. Ethnopharmacol. 2015; 172: 421-429. [DOI:10.1016/j.jep.2015.06.047]
18. Hamakawa T, Sasaki S, Shibata Y, Imura M, Kubota Y, Kojima Y and Kohri K. Interleukin-18 may lead to benign prostatic Hyperplasia via Thrombospondin-I production in prostatic smooth muscle cells. The Prostate. 2014; 74(6): 590-601. [DOI:10.1002/pros.22773]
19. Kamiloglu S, Sari G, Ozdal T and Capanoglu E. Guidelines for cell viability assays. Food Front. 2020; 1(3): 332-349. [DOI:10.1002/fft2.44]
20. Lakshmanan I and Batra SK. Protocol for Apoptosis assay by Flow Cytometry using Annexin V staining method. Bio Protoc. 2013; 3(6): 1-3. [DOI:10.21769/BioProtoc.374]
21. Bras M, Queenan B and Susin SA. Programmed cell death via mitochondria: Different modes of dying. Biochem. 2005; 70: 231-239. [DOI:10.1007/s10541-005-0105-4]
22. Boujrad H, Gubkina O, Robert N, Krantic S and Susin AS. AIF-mediated programmed necrosis: A highly regulated way to die. Cell Cycle 2007; 6(21): 2612-2619. [DOI:10.4161/cc.6.21.4842]
23. Hail N, Carter B Z, Konopleva M and Andreeff M. Apoptosis effector mechanisms: A requiem performed in different keys. Apoptosis 2006; 11: 889-904. [DOI:10.1007/s10495-006-6712-8]
24. Liao X, Tang S, Thrasher J B, Griebling T L and Li B. Small-interfering RNA-induced androgen receptor silencing leads to apoptotic cell death in prostate cancer. Mol. Cancer Ther. 2005; 4(4): 505-515. [DOI:10.1158/1535-7163.MCT-04-0313]
25. Yasuhara S, Zhu Y, Matsui T, Tipirneni N, Yasuhara Y, Kaneki M, Rosenzweig A and Martyn J A J. Comparison of comet assay, electron microscopy, and flow cytometry for detection of apoptosis. J. Histochem. Cytochem. 2003; 51(7): 873-885. [DOI:10.1177/002215540305100703]
26. Souza F O, Sorbo J M, Regasini L O, Bolzani V S, Rosa J C, Czernys E S, Valente V, Moreira T F, Navegante G, Fernandes B C and Soares C P. Nitensidine B affects proteins of the glycolytic pathway and induces apoptosis in cervical carcinoma cells immortalized by HPV16. Phytomedicine 2018; 48: 179-186. [DOI:10.1016/j.phymed.2018.05.016]
27. Russell P J, Russell P, Rudduck C, Tse B W C, Williams E D and Raghavan D . Establishing prostate cancer patient derived xenografts: Lessons learned from older studies. Prostate 2015; 75(6): 628-636. [DOI:10.1002/pros.22946]
28. Ellis L M and Fidler I J. Finding the tumor copycat: Therapy fails, patients don't. Nat. Med. 2010; 16: 974-975. [DOI:10.1038/nm0910-974]
29. Gillet J P, Calcagno A M, Varma S, Marino M, Green L J, Vora M I, Patel C, Orina J N, Eliseeva T A, Vineet S, Padmanabhan R, Davidson B, Ganapathi R, Sood A K, Rueda B R, Ambudkar S V and Gottesman M M. Redefining the relevance of established cancer cell lines to the study of mechanisms of clinical anti-cancer drug resistance. Proc Natl Acad Sci. USA 2011; 108(46): 18708-18713. [DOI:10.1073/pnas.1111840108]
30. Whittle J R, Lewis M T, Lindeman G J and Visvader J E. Patient-derived xenograft models of breast cancer and their predictive power. Breast Cancer Res. 2015; 17: [DOI:10.1186/s13058-015-0523-1]
31. Sajjad H, Imtiaz S, Noor T, Siddiqui YH, Sajjad A, Zia M. Cancer models in preclinical research: A chronicle review of advancement in effective cancer research. Animal Model. Exp. Med. 2021; 4(2): 87-103. [DOI:10.1002/ame2.12165]
32. Ibarra-Sánchez M J, Martínez-Aguilar J F and Esparza-López J. Deriving primary cancer cell cultures for personalized therapy. Rev. Invest Clin. 2019; 71(6): 369-380. [DOI:10.24875/RIC.19002832]
33. Killekar K, Puranik S I, Akbar A A, Ghagane S C, Nerli R B, Hiremath M B. Overview of primary cell culture models in preclinical research of prostate and bladder cancer [Internet]. Cell Culture - Advanced Technology and Applications in Medical and Life Sciences. IntechOpen; 2022. [DOI:10.5772/intechopen.99493]
34. Allkanjari O and Vitalone A. What do we know about phytotherapy of benign prostatic hyperplasia? Life Sci. 2015; 126: 42-56. [DOI:10.1016/j.lfs.2015.01.023]
35. Almança C C J, Saldanha S V, Sousa D R, Trivilina L O, Nunes L C, Porfírio L C and Marinho B G. Toxicological evaluation of acute and sub-chronic ingestion of hydroalcoholic extract of Solanum cernuum Vell. in mice. J. Ethnopharmacol. 2011; 138(2): 508-512. [DOI:10.1016/j.jep.2011.09.045]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به فصلنامه علمی پژوهشی گیاهان دارویی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Journal of Medicinal Plants

Designed & Developed by : Yektaweb