سال 20، شماره 79 - ( English 1400 )
سال 20 شماره 79 صفحات 46-37 |
برگشت به فهرست نسخه ها
آدیبا آنجوم1 
، ذاکر سلطان2 ، ساهنا فردوش3 ، محمد کیسارل اسلام1 ، محمد آ رشید1 ، لوتفان نهر4 ، ساتیاجیت دی سارکر* 5
، ذاکر سلطان2 ، ساهنا فردوش3 ، محمد کیسارل اسلام1 ، محمد آ رشید1 ، لوتفان نهر4 ، ساتیاجیت دی سارکر* 5
1- گروه شیمی دارویی، دانشکده داروسازی، دانشگاه داکا، داکا -1000 ، بنگلادش
2- دانشگاه دهکا، بنگلادش
3- دانشکده علوم ، دانشگاه بین المللی اسلامی مالزی (IIUM) ، کوآتان ، پاهنگ ، مالزی
4- آزمایشگاه تنظیم کننده های رشد ، انستیتوی گیاه شناسی تجربی ASCR و دانشگاه Palacký ، Šlechtitelů 27 ، 78371 Olomouc ، جمهوری چک
5- مرکز کشف محصولات طبیعی ، دانشکده داروسازی و علوم بیومولکولی ، دانشگاه جان مورس لیورپول ، ساختمان جیمز پارسونز ، خیابان بیروم ، لیورپول L3 3AF ، انگلستان ، S.Sarker@ljmu.ac.uk
2- دانشگاه دهکا، بنگلادش
3- دانشکده علوم ، دانشگاه بین المللی اسلامی مالزی (IIUM) ، کوآتان ، پاهنگ ، مالزی
4- آزمایشگاه تنظیم کننده های رشد ، انستیتوی گیاه شناسی تجربی ASCR و دانشگاه Palacký ، Šlechtitelů 27 ، 78371 Olomouc ، جمهوری چک
5- مرکز کشف محصولات طبیعی ، دانشکده داروسازی و علوم بیومولکولی ، دانشگاه جان مورس لیورپول ، ساختمان جیمز پارسونز ، خیابان بیروم ، لیورپول L3 3AF ، انگلستان ، S.Sarker@ljmu.ac.uk
چکیده: (2809 مشاهده)
مقدمه: گیاه Erythrina fusca گونه‌ای فردوسی است که بهطور گسترده در کشورهای گرمسیری و نیمه گرمسیری آسیا یافت می‌شود و به دلیل استفاده از آن در طب سنتی برای درمان بیماری‌های مختلف انسان، به عنوان مثال تب، اختلالات کبدی، عفونت‌ها و سردردها مشهور است. هدف: هدف از این تحقیق، بررسی فیتوشیمیایی و ارزیابی فعالیت ضدمیکروبی و روبش رادیکال‌های آزاد گیاه E. fusca بود. روش بررسی: پوست ساقه آسیاب شده این گیاه با استفاده از متانول و روش خیساندن عصاره‌گیری شده و با حلال‌های مختلف آلی تقسیم‌بندی شده و ترکیبات به روش کروماتوگرافی جدا شدند. ساختار ترکیبات جدا شده با آنالیزهای طیف‌سنجی تأیید شد. فعالیت ضدباکتریایی با روش انتشار دیسک مورد بررسی قرار گرفت و فعالیت روبش رادیکال‌های آزاد با روش DPPH تعیین شد. نتایج: فراکسیون تتراکلرید کربنی عصاره متانولی گیاه دارای شینترپوکارپین (1)، لوپینیفولین (2)، 9،3 -دی هیدروکسی-4-(3،3 -دی متیل آلیل) [Ra11 ،Ra6] پتروکارپان (3) و بتا- سیتوسترول (4) بود. ترکیبات 1 تا 3 فعالیت ضدمیکروبی قابل توجهی در برابر پنج باکتری گرم مثبت و هشت باکتری گرم منفی و سه سویه قارچی آزمایش شده در این مطالعه نشان دادند. ترکیب 1 بالاترین هاله مهار رشد (19/4 میلی‌متر) را در برابر باسیلوس سوبتیلیس نشان داد. علاوه بر این، ترکیبات اثرات مهار رادیکال‌های آزاد را در روش DPPH با مقادیر IC50 برابر با 8/8 ،7/7 و 7/9 میکروگرم در میلی‌لیتر به ترتیب برای ترکیبات 1، 2 و 3 نشان دادند. با این حال، آنها در تست سنجش عمومی سمیت BSL تا حدودی سمیت نشان دادند. نتیجه‌گیری: جداسازی ترکیبات فعال زیستی 1 تا 3 از برخی کاربردهای دارویی سنتی این گیاه پشتیبانی می‌کند. با این حال، سمیت عمومی یافت شده در روش BSL ممکن است نگرانی‌هایی را در مورد ایمنی آن ایجاد کند، در حالی که این تحقیق راه جدیدی از تحقیقات آینده در مورد سمیت سلولی این ترکیبات در برابر رده‌های سلولی سرطانی انسان ارائه می‌دهد.
واژه‌های کلیدی: گیاه فردوسی، فلاونوئیدها، پتروکارپانها، استرول، فعالیت ضدمیکروبی، سنجش DPPH، سنجش BSL
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
فارماكوگنوزی و فارماسيوتيكس
دریافت: 1400/3/8 | پذیرش: 1400/4/20 | انتشار: 1400/6/10
دریافت: 1400/3/8 | پذیرش: 1400/4/20 | انتشار: 1400/6/10
فهرست منابع
1. El-Halawany AM, El Dine RS, Chung MH, Nishihara T and Hattori M. Screening for estrogenic and antiestrogenic activities of plants growing in Egypt and Thailand. Pharmacog. Res. 2011; 3: 107-113. [DOI:10.4103/0974-8490.81958]
2. Jimenez-Acosta D, Marquez-Vizcaino R, de la Rosa-Torres C and Pabon-Vidal A. Antiplasmodial and antibacterial in vitro activity form extracts of the bark of Erythrina fusca Lour. (Fabaceae). Actualidades Biologicas 2016; 38: 139-144.
3. Orwa C, Mutua A, Kindt R, Jamnadass R and Anthony S. Agroforestree database: A tree reference and selection guide. 2009; version 4.0. World Agroforestry Centre, Kenya. p.1. https://www.worldagroforestry.org/publication/agroforestree-database-tree-reference-and-selection -guide-version-40.
4. Mors WB, Rizzini CT and Pereira NA. Medicinal plants of Brazil, Reference Publications. 2000; Michigan, USA. ISBN: 0917256425.
5. Sornay P De. Translated by Flattely FW. Green manures and manuring in the tropics. 1916; John Bale, Sons and Danielsson Ltd., London. https://archive.org/details/ greenmanuresmanu00sornrich.
6. Bipat R, Toelsie JR, Magali I, Soekhoe R, Stender K, Wangsawirana A, Oedairadjsingh K, Pawirodihardjo J and Mans DRA. Beneficial effect of medicinal plants on the contractility of post-hypoxic isolated guinea pig atria - potential implications for the treatment of ischimic-reperfusion injury. Pharm. Biol. 2016; 54: 1483-1489. [DOI:10.3109/13880209.2015.1107103]
7. Pino-Rodriguez S, Gonzalez-Guevara JL, Garcia-Torres M, Carballo-Gonzalez MT, Echemendia-Arana OA, Garrido-Garrido G, Gonzalez-Lavaut JA, Molina-Torres J and Prieto-Gonzalez S. Preliminary phytochemical screening and in vitro antiherpetic activity of Erythrina fusca Lour. Acta Farm. Bonaerense 2004; 23: 453-458. http://www. latamjpharm. org/trabajos/23/4/LAJOP_23_4_1_4_J7J9B1H715.pdf.
8. Barton DHR, Gunatilaka AA, Letcher RM, Lobo AMFT and Widdowson DA. Phenol oxidation and biosynthesis. Part 22. The alkaloids of Erythrina lysistemon, E. abyssinica, E. poeppigiana, E. fusca and E. lithosperma: the structure of erythratidine. J. Chem. Soc. -Perkin Trans. 1 1973; 8: 874-880. [DOI:10.1039/p19730000874]
9. Forum ZT, Ayafor JF, Wandji J, Fomban WG and Nkengfack AE. Erythrinasinate, an ester from three Erythrina species. Phytochemistry 1986; 25(3): 757-759. [DOI:10.1016/0031-9422(86)88044-X]
10. Soto-Hernandez M and Kackson AH. Erythrina alkaloids: isolation and characterization of alkaloids from seven Erythrina species. Planta Med. 1994; 60(2): 175-177. [DOI:10.1055/s-2006-959445]
11. Khaomek P, Ruangrungsi N, Saifah E, Sribolmas N, Ichino C, Kiyohara H amd Yamada H. A new pterocarpan from Erythrina fusca. Heterocycles 2004; 63(4): 879-884. [DOI:10.3987/COM-03-9994]
12. Innok P, Rukachaisirikul T and Suksamarn A. Flavonoids and pterocarpans from the bark of Erythrina dusca. Chem. Pharm. Bull. 2009; 57: 993-996. [DOI:10.1248/cpb.57.993]
13. Innok P, Rukachaisirikul T and Phongpaichit S. Fuscacarpans A-C, a new pterocarpans from the stems of Erythrina fusca. Fitoterapia 2010; 81: 518-523. [DOI:10.1016/j.fitote.2010.01.009]
14. Khaomek P, Ichino C, Ishiyama A, Sekiguchi H, Namatame M, Ruangrungsi N, Siafah E, Kiyohara H, Otoguro K, Omura S and Yamada H. In vitro antimalarial activity of prenylated flavonoids from Eruthrina fusca. J. Nat. Prod. 2008; 62: 217-220. [DOI:10.1007/s11418-007-0214-z]
15. Garcia-Beltran O, Soto-Delgado J, Iturriaga-Vasquez P, Areche C and Cassels BK. Structure reassignment of epierythratidine, an alkaloid from Erythrina fusca, based on NMR studies and computational methods. J. Chilean Chem. Soc. 2012; 57: 1323-1327. [DOI:10.4067/S0717-97072012000300027]
16. Anjum A, Sultan MZ, Hasan CM and Rashid MA. Antibacterial and cytotoxic constituents from Bridelia verrucosa Haines growing in Bangladesh. Dhaka Univ. J. Pharm. Sci. 2017; 16: 61-68. [DOI:10.3329/dujps.v16i1.33383]
17. Anjum A, Sultan MZ, Sikder MAA, Hasan CM, Al-Mansoor MA and Rashid MA. Bioactive steroid and triterpenoids from Bridelia stipularis (L) Blume. Dhaka Univ. J. Pharm. Sci. 2016; 15: 221-225. [DOI:10.3329/dujps.v15i2.30941]
18. VanWagenen BC, Larsen R, Cardellina JH, Randazzo D, Lidert ZC and Swithenbank C. Ulosantoin, a potent insecticide from the sponge Ulosa ruetzleri. J. Org. Chem. 1993; 58: 335-337. [DOI:10.1021/jo00054a013]
19. Stahl E. Thin layer chromatography. 1996; 2nd Eds., Springer Verlag Berlin, Heidelberg, New York, pp. 855-904. ISBN 978-3-642-88488-7.
20. Mclaughin JL, Rogers LI and Anderson JE. The use of biological assays to evaluate botanicals. Drug Inform. J. 1998; 32: 513-524. [DOI:10.1177/009286159803200223]
21. Meyer BN, Ferringni NR, Puam JE, Lacobsen LB, Nichols DE and McLaughlin JL. Brine shrimp: a convenient general bioassay for active constituents. Planta Med. 1982; 45: 31-32. [DOI:10.1055/s-2007-971236]
22. Bauer AW, Kirby WMM, Sherris JC and Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disc method. Am. J. Clin. Path. 1966; 45: 493-496. [DOI:10.1093/ajcp/45.4_ts.493]
23. Brand-Williams W, Cuvelier ME and Berset C. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebensm. Wiss. Technol. 1995; 28: 25-30. [DOI:10.1016/S0023-6438(95)80008-5]
24. Kitagawa I, Chen WZ, Hori K, Harada E, Yasuda N, Yoshikawa M and Ren J. Chemical studies of Chinese licorice-roots. I. Elucidation of five new flavonoid constituents from the roots of Glycyrrhiza glabra L. collected in Xinjiang. Chem. Pharm. Bull. 1994; 42: 1056-1062. [DOI:10.1248/cpb.42.1056]
25. Mahidol C, Prawat H, Ruchirawat S, Likhitwitayawuid K, Lin LZ and Cordell GA. Prenylated flavonones from Derris reticulata. Phytochemistry 1997; 45: 825-829. [DOI:10.1016/S0031-9422(97)00001-0]
26. Yusook K, Weernantanapan O, Hua Y, Kumkrail P and Chudapongse N. Lupinifolin from Derris reticulata psseses bactericidal activity on Staphylococcus aureus by disrupting bacterial cell membrane. J. Nat. Prod. 2017; 71: 357-366. [DOI:10.1007/s11418-016-1065-2]
27. Cottiglia F, Casu L, Bonsignore L, Floris C, Leonti M, Gertsch J and Heilmann J. New cytotoxic prenylated isoflavonoids from Bituminaria morisiana. Planta Med. 2005; 71: 254-260. [DOI:10.1055/s-2005-837841]
28. Morales G, Sierra P, Mancilla A, Paredes A, Loyola LA, Gallardo O and Borquez J. Secondary metabolites from four medicinal plants from northern Chile: antimicrobial activity and biotoxicity against Artemia salina. J. Chil. Chem. Soc. 2003; 48: 13-18. [DOI:10.4067/S0717-97072003000200002]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |