سال 18، شماره 72 - ( 8-1398 )
سال 18 شماره 72 صفحات 191-183 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Yadegari M, Mirdar S, Hamidian G, Berenjeian Tabrizi H. Effect of the Adiantum capillus-veneris Extract on Immunohistochemical Expression of Lung Heat-Shock Proteins in Rats Exposed to Hypoxia. J. Med. Plants 2019; 18 (72) :183-191
URL: http://jmp.ir/article-1-2713-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-2713-fa.html
یادگاری مهدی، میردار شادمهر، حمیدیان غلامرضا، برنجیان تبریزی حسین. تأثیر عصاره پرسیاوش بر بیان ایمونوهیستوشیمیایی پروتئین‌های شوکی-گرمایی ریه رت‌های قرار گرفته در معرض هایپوکسی. فصلنامه گياهان دارویی. 1398; 18 (72) :183-191
مهدی یادگاری1 
، شادمهر میردار2 ، غلامرضا حمیدیان3 ، حسین برنجیان تبریزی* 4
، شادمهر میردار2 ، غلامرضا حمیدیان3 ، حسین برنجیان تبریزی* 4
1- دکتری تخصصی، گروه فیزیولوژی ورزشی دانشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشگاه مازندران، مازندران، ایران
2- استاد، دکترای تخصصی فیزیولوژی ورزشی، گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشگاه مازندران، مازندران، ایران
3- استادیار، دکترای تخصصی بافت‌شناسی، گروه علوم پایه دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
4- استادیار، گروه تربیت بدنی، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران ، hberenjeian@gmail.com
2- استاد، دکترای تخصصی فیزیولوژی ورزشی، گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشگاه مازندران، مازندران، ایران
3- استادیار، دکترای تخصصی بافت‌شناسی، گروه علوم پایه دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
4- استادیار، گروه تربیت بدنی، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران ، hberenjeian@gmail.com
چکیده: (3315 مشاهده)
مقدمه: با وجود مصارف سنتی گیاه پرسیاوش، هنوز تحقیقات بالینی و ورزشی کاملی روی این گیاه ارزشمند صورت نگرفته است.
هدف: هدف پژوهش حاضر بررسی تأثیر عصاره پرسیاوش بر بیان ایمونوهیستوشیمیایی پروتئین‌های شوکی-گرمایی ریه، در رت‌های قرار گرفته در معرض هایپوکسی بود.
روش بررسی: نمونه‌های پژوهش حاضر را 24 سر رت نر نژاد ویستار (8 سر کنترل، 8 سر هایپوکسی- تمرین و 8 سر هایپوکسی تمرین مکمل)، کاملاً سالم و بدون سابقه بیماری (سن 4 هفته و میانگین وزنی 9±72 گرم) تشکیل دادند. گروه تجربی پس از 6 هفته تمرین تناوبی، 3 هفته در محیط هایپوکسی نگهداری شد. نصف رت‌های تجربی در طی 3 هفته قرارگیری در هایپوکسی، روزانه 500 میلی‌گرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن عصاره پرسیاوش دریافت کردند. جهت انجام آزمایش‌های ایمونوهیستوشیمیایی، بافت ریه خارج و سطح پروئین‌های HSP70 و HSP90اندازه‌گیری شد.
نتایج: در گروه تمرین- هایپوکسی نسبت به گروه کنترل، بیان پروتئین HSP70 و HSP90 به طور معنادار افزایش یافت (05/0 P≤). در گروه تمرین – هایپوکسی - مکمل نسبت به گروه تمرین - هایپوکسی، بیان پروتئین HSP70 و HSP90 به طور معنادار کاهش یافت (05/0 P≤).
نتیجه‌گیری: تأثیرات کاهشی عصاره پرسیاوش بر بیان پروتئین‌های شوکی گرمایی پارانشیم ریه در شرایط هایپوکسی احتمالاً دلالت بر کاهش شرایط استرس اکسایشی در ریه دارد.
هدف: هدف پژوهش حاضر بررسی تأثیر عصاره پرسیاوش بر بیان ایمونوهیستوشیمیایی پروتئین‌های شوکی-گرمایی ریه، در رت‌های قرار گرفته در معرض هایپوکسی بود.
روش بررسی: نمونه‌های پژوهش حاضر را 24 سر رت نر نژاد ویستار (8 سر کنترل، 8 سر هایپوکسی- تمرین و 8 سر هایپوکسی تمرین مکمل)، کاملاً سالم و بدون سابقه بیماری (سن 4 هفته و میانگین وزنی 9±72 گرم) تشکیل دادند. گروه تجربی پس از 6 هفته تمرین تناوبی، 3 هفته در محیط هایپوکسی نگهداری شد. نصف رت‌های تجربی در طی 3 هفته قرارگیری در هایپوکسی، روزانه 500 میلی‌گرم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن عصاره پرسیاوش دریافت کردند. جهت انجام آزمایش‌های ایمونوهیستوشیمیایی، بافت ریه خارج و سطح پروئین‌های HSP70 و HSP90اندازه‌گیری شد.
نتایج: در گروه تمرین- هایپوکسی نسبت به گروه کنترل، بیان پروتئین HSP70 و HSP90 به طور معنادار افزایش یافت (05/0 P≤). در گروه تمرین – هایپوکسی - مکمل نسبت به گروه تمرین - هایپوکسی، بیان پروتئین HSP70 و HSP90 به طور معنادار کاهش یافت (05/0 P≤).
نتیجه‌گیری: تأثیرات کاهشی عصاره پرسیاوش بر بیان پروتئین‌های شوکی گرمایی پارانشیم ریه در شرایط هایپوکسی احتمالاً دلالت بر کاهش شرایط استرس اکسایشی در ریه دارد.
نوع مطالعه: پژوهشی |
موضوع مقاله:
فارماكولوژی و سم شناسی
دریافت: 1397/4/22 | پذیرش: 1397/6/11 | انتشار: 1398/8/6
دریافت: 1397/4/22 | پذیرش: 1397/6/11 | انتشار: 1398/8/6
فهرست منابع
1. Semenza GL. Hypoxia-inducible factors in physiology and medicine. Cell 2012; 148 (3): 399-408. [DOI:10.1016/j.cell.2012.01.021]
2. Majmundar AJ, Wong WJ and Simon MC. Hypoxia-inducible factors and the response to hypoxic stress. Molecular Cell. 2010; 40 (2): 294-309. [DOI:10.1016/j.molcel.2010.09.022]
3. Richalet J-P, Larmignat P, Poitrine E, Letournel M and Canouï-Poitrine F. Physiological risk factors for severe high-altitude illness: a prospective cohort study. American J. Respiratory and Critical Care Medicine 2012; 185 (2): 192-8. [DOI:10.1164/rccm.201108-1396OC]
4. Majmundar AJ, Wong WJ and Simon MC. Hypoxia-inducible factors and the response to hypoxic stress. Molecular Cell 2010; 40: 294-309. [DOI:10.1016/j.molcel.2010.09.022]
5. Yadegari M, Mirdar S and Hamidian G. The impact of three weeks taper in hypoxic environment on apoptotic index of Bax / Bcl2 and pulmonary alveolar epithelial cell population. 10th international conference of Tehran. 2017; 10.22089/10thconf.2017.680.
6. Yadegari M, Riahi S, Mirdar S, Hamidiyan GH, Yousefpour M and Riyahi F. Immunohistochemical detection of apoptotic factors Bax and Bcl-2 in the lung alveoli, followed by six weeks of high intensity exercise training. Daneshvar Medicine 2016; 24 (129): 31-40.
7. Yadegari M, Mirdar S and Hamidian G. The effect of high-intensity interval training on lung parenchymal and non-parenchymal structural changes. Daneshvar Medicine 2016; 23 (124): 51-60.
8. Yadegari M, Riahi S, mirdar S, Hamidiyan G and Mosadegh P. investigatingof IL-6 level and lung inflammatory cells after performing high-intensity interval training and Exposure to hypoxic environment. SJE. 2016; 18 (3): 26-36.
9. Yadegari M, Riahi S, Mirdar S, Hamidian G and Mosadegh zavaragh P. Effect of the Adiantum capillus Veneris Extract on Bax and Bcl2 Apoptotic Markers of Lung Modulation in Trained Rats and Exposed to Hypoxic Stress. Journal of Medicinal Plants 2018; 4 (64): 162-71.
10. Latchman DS. Heat shock proteins and cardiac protection. Cardiovascular Res. 2001; 51 (4): 637-46. [DOI:10.1016/S0008-6363(01)00354-6]
11. Asea AA and Pedersen BK. Heat shock proteins and whole body physiology: Springer Science & Business Media; 2009, pp: 38-45. [DOI:10.1007/978-90-481-3381-9]
12. Packer N, Pervaiz N and Hoffman-Goetz L. Does exercise protect from cognitive decline by altering brain cytokine and apoptotic protein levels? A systematic review of the literature. Exerc. Immunol. Rev. 2010; 16: 138-62.
13. Podhorska-Okolow M, Dziegiel P, Gomulkiewicz A, Kisiela D, Dolinska-Krajewska B, Jethon Z and et al. Exercise-induced apoptosis in rat kidney is mediated by both angiotensin II AT1 and AT2 receptors. 2006, 11-17.
14. Mujika I. Intense training: the key to optimal performance before and during the taper. Scandinavian J. Medicine & Science in Sports 2010; 20 (s2): 24-31. [DOI:10.1111/j.1600-0838.2010.01189.x]
15. Yuan Q, Zhang X, Liu Z, Song S, Xue P, Wang J and et al. Ethanol extract of Adiantum capillus-veneris L. suppresses the production of inflammatory mediators by inhibiting NF-κB activation. J. Ethnopharmacol. 2013; 147 (3): 603-11. [DOI:10.1016/j.jep.2013.03.046]
16. Mehdi YA SM and GholamReza HA. The effect of high-intensity interval training on lung parenchymal and non-parenchymal structural changes. Daneshvar Medicine 2016; 23 (124): 51-60.
17. Nilforoushzadeh MA, Javanmard SH, Ghanadian M, Asghari G, Jaffary F, Yakhdani AF and et al. The effects of Adiantum capillus-veneris on wound healing: An experimental in vitro evaluation. International J. Preventive Medicine 2014; 5 (10): 1261.
18. Wendakoon C, Calderon P and Gagnon D. Evaluation of selected medicinal plants extracted in different ethanol concentrations for antibacterial activity against human pathogens. J. Medicinally Active Plants 2012; 1 (2): 60-8.
19. Rajurkar N and Gaikwad K. Evaluation of phytochemicals, antioxidant activity and elemental content of Adiantum capillus veneris leaves. J. Chemical and Pharmaceutical Res. 2012; 4 (1): 365-74.
20. Schneider JP and Ochs M. Stereology of the lung. Methods in Cell Biol. 2012; 113: 257-94. [DOI:10.1016/B978-0-12-407239-8.00012-4]
21. Hofman F. Immunohistochemistry. Current Protocols in Immunol. 2002, 21.4. 1-.4. 3.
22. Di Cataldo S, Ficarra E, Acquaviva A and Macii E. Automated segmentation of tissue images for computerized IHC analysis. Computer Methods and Programs in Biomedicine 2010; 100 (1): 1-15. [DOI:10.1016/j.cmpb.2010.02.002]
23. Aoi W, Naito Y, Takanami Y, Kawai Y, Sakuma K, Ichikawa H and et al. Oxidative stress and delayed-onset muscle damage after exercise. Free Radical Biology and Medicine 2004; 37 (4): 480-7. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2004.05.008]
24. Lawler HM, Underkofler CM, Kern PA, Erickson C, Bredbeck B and Rasouli N. Adipose tissue hypoxia, inflammation, and fibrosis in obese insulin-sensitive and obese insulin-resistant subjects. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2016; 101 (4): 1422-8. [DOI:10.1210/jc.2015-4125]
25. Fisher-Wellman K and Bloomer RJ. Acute exercise and oxidative stress: a 30 year history. Dynamic Medicine 2009; 8 (1): 1. [DOI:10.1186/1476-5918-8-1]
26. Eltzschig HK and Carmeliet P. Hypoxia and inflammation. New England J. Medicine 2011; 364 (7): 656-65. [DOI:10.1056/NEJMra0910283]
27. Paulsen G, Vissing K, Kalhovde JM, Ugelstad I, Bayer ML, Kadi F and et al. Maximal eccentric exercise induces a rapid accumulation of small heat shock proteins on myofibrils and a delayed HSP70 response in humans. American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology 2007; 293 (2): R844-R53. [DOI:10.1152/ajpregu.00677.2006]
28. Nixon B, Bromfield EG, Cui J and De Iuliis GN. Heat Shock Protein A2 (HSPA2): Regulatory Roles in Germ Cell Development and Sperm Function. The Role of Heat Shock Proteins in Reproductive System Development and Function: Springer; 2017, pp: 67-93. [DOI:10.1007/978-3-319-51409-3_4]
29. Atalay M, Oksala NK, Laaksonen DE, Khanna S, Nakao C, Lappalainen J and et al. Exercise training modulates heat shock protein response in diabetic rats. J. Applied Physiol. 2004; 97 (2): 605-11. [DOI:10.1152/japplphysiol.01183.2003]
30. Yuan Q, Zhang X, Liu Z, Song S, Xue P, Wang J and et al. Ethanol extract of Adiantum capillus-veneris L. suppresses the production of inflammatory mediators by inhibiting NF-κB activation. J. Ethnopharmacol. 2013; 147 (3): 603-11. [DOI:10.1016/j.jep.2013.03.046]
31. Kumar A. Antioxidant effect of Adiantum capillus-veneris Linn. on human lymphocyte: an in vitro study. J. Cell and Tissue Res. 2009; 9 (2): 1899-902.
32. Jiang M-Z, Yan H, Wen Y and Li X-M. In vitro and in vivo studies of antioxidant activities of flavonoids from Adiantum capillus-veneris L. Afr. J. Pharm. Pharmacol. 2011; 5 (18): 2079-85. [DOI:10.5897/AJPP11.500]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
